L’acide lysophosphatidique (LPA) est un phospholipide constitué d’un squelette glycérol-phosphate sur lequel est greffé un acide gras, en position 1 ou en position 2, par l’intermédiaire d’une liaison acyl, alkyl ou alkényl (Figure 1). Chez les mammifères, les espèces majoritaires de LPA retrouvées dans les liquides biologiques sont constituées d’acides gras à longue chaîne saturée (C18 :0 ; C16 :0) ou insaturée (C18 :1 ; C20 :4). Ces espèces majoritaires présentent généralement l’activité biologique la plus forte.

Figure 1. Formule chimique de l’acide lysophosphatidique (LPA). Le LPA est constitué d’un squelette glycérol phosphate sur lequel est greffé un acide gras, en position 1 ou en position 2, par l’intermédiaire d’une liaison acyl, alkyl ou alkényl. Il s’agit sur ce schéma de la forme oléoyl (C18 :1), qui est la plus couramment utilisée dans les études expérimentales.

Figure 1. Formule chimique de l’acide lysophosphatidique (LPA). Le LPA est constitué d’un squelette glycérol phosphate sur lequel est greffé un acide gras, en position 1 ou en position 2, par l’intermédiaire d’une liaison acyl, alkyl ou alkényl. Il s’agit sur ce schéma de la forme oléoyl (C18 :1), qui est la plus couramment utilisée dans les études expérimentales.

La première démonstration de l’existence d’un LPA bioactif remonte à 1963 où W. Vogt démontra que le LPA était impliqué dans l’effet vasoconstricteur induit par des extraits d’intestin de grenouille sur des cellules musculaires lisses de lapin [ 1]. Plusieurs années après, en 1978, il fut montré que l’injection intraveineuse de LPA conduisait à des effets rapides sur la pression artérielle [ 2]. À la même période, le LPA, connu comme un puissant facteur pro-agrégant [ 3], était mis en évidence dans le sang lors de l’agrégation plaquettaire [ 4]. Les effets biologiques engendrés par le LPA bioactif ne résultaient pas d’une perturbation non spécifique de la structure de la membrane cellulaire due à une possible action détergente (propriété classique de certains lysophospholipides), mais de la mise en jeu probable d’un récepteur. Ainsi, le LPA était capable d’augmenter la synthèse d’ADN dans des fibroblastes selon un mécanisme sensible à la toxine pertussique [ 5], suggérant l’implication d’un récepteur couplé à une protéine G. Le premier récepteur du LPA fut cloné en 1996 [ 6].

Le LPA est présent dans plusieurs liquides biologiques où il est maintenu en solution grâce à sa liaison à l’albumine qui lui sert de véhicule (Figure 2). Il est présent dans le sang où son origine cellulaire semble multiple. Il peut s’agir des plaquettes sanguines : le sérum obtenu après agrégation plaquettaire contient de fortes concentrations de LPA (2 à 20 muM) [ 7]. Le LPA est présent en forte concentration dans les ascites prélevées chez des patientes atteintes de cancer ovarien [ 8]. Le LPA est également retrouvé en abondance dans le liquide folliculaire, associé aux lipoprotéines [ 9, 10]. Notre groupe a trouvé du LPA dans le milieu interstitiel du tissu adipeux sous-cutané humain prélevé par microdialyse, avec comme origine cellulaire, les adipocytes [ 11]. Enfin, le LPA est présent dans l’humeur aqueuse et le liquide lacrymal après blessure de la cornée [ 12], ainsi que dans la salive [ 13].

Figure 2. Anabolisme et catabolisme de l’acide lysophosphatidique. L’acide lysophosphatidique (LPA) est synthétisé directement à l’extérieur de la cellule. Il se trouve en solution dans le milieu extra cellulaire grâce à sa liaison à l’albumine. Le LPA peut provenir de l’hydrolyse de la lysophosphatidylcholine (LPC) sous l’action d’une activité lysophospholipase D (lysoPLD). Une activité lysoPLD soluble est portée par l’autotaxine (ATX). La LPC est générée par hydrolyse de la phosphatidylcholine (PC) membranaire sous l’action de petites phospholipases, les phospholipases A2 sécrétées (sPLA2). Les sPLA2 peuvent également catalyser la formation de LPA à partir d’acide phosphatidique (PA), lui-même issu de l’hydrolyse de la PC par une phospholipase D (PLD). Le LPA est inactivé par déphosphorylation sous l’action des lipide phosphate phosphohydrolases (LPP) en donnant des monoacylglycérol (MG). G3P : glycérol-3-phosphate ; DG : diacylglycérol ; TG : triacylglycérol ; LCAT : lécithine cholestérol acyl transférase ; flip-flop : diffusion transversale des phospholipides d’une couche à l’autre de la membrane.

Figure 2. Anabolisme et catabolisme de l’acide lysophosphatidique. L’acide lysophosphatidique (LPA) est synthétisé directement à l’extérieur de la cellule. Il se trouve en solution dans le milieu extra cellulaire grâce à sa liaison à l’albumine. Le LPA peut provenir de l’hydrolyse de la lysophosphatidylcholine (LPC) sous l’action d’une activité lysophospholipase D (lysoPLD). Une activité lysoPLD soluble est portée par l’autotaxine (ATX). La LPC est générée par hydrolyse de la phosphatidylcholine (PC) membranaire sous l’action de petites phospholipases, les phospholipases A2 sécrétées (sPLA2). Les sPLA2 peuvent également catalyser la formation de LPA à partir d’acide phosphatidique (PA), lui-même issu de l’hydrolyse de la PC par une phospholipase D (PLD). Le LPA est inactivé par déphosphorylation sous l’action des lipide phosphate phosphohydrolases (LPP) en donnant des monoacylglycérol (MG). G3P : glycérol-3-phosphate ; DG : diacylglycérol ; TG : triacylglycérol ; LCAT : lécithine cholestérol acyl transférase ; flip-flop : diffusion transversale des phospholipides d’une couche à l’autre de la membrane.

En raison de sa nature polaire, la diffusion passive du LPA au travers des membranes biologiques est peu probable. La présence de LPA dans un milieu biologique extracellulaire ne peut résulter que d’un transport actif ou d’une synthèse directement dans le milieu extracellulaire. Il existe des protéines de liaison du LPA (albumine, protéines de liaison des acides gras, gelsoline), mais aucun transporteur transmembranaire n’a été mis en évidence. En revanche, des enzymes susceptibles de synthétiser du LPA à l’extérieur de la cellule existent. Il peut s’agir d’enzymes sécrétées ou d’enzymes membranaires possédant un site catalytique orienté vers l’extérieur de la cellule. Deux types d’enzymes remplissent ces conditions : les phospholipases A2 sécrétées (sPLA2) et la lysophospholipase D sécrétée (s-lysoPLD) (Figure 2).

Les sPLA2 sont de petites phospholipases (autour de 15 kDa) qui catalysent l’hydrolyse des glycérophospholipides, produisant des acides gras et des lysophospholipides [ 14]. En utilisant l’acide phosphatidique (PA) (lui même issu de l’hydrolyse de la phosphatidylcholine par une phospholipase D) comme substrat, l’activité PLA2 conduit à la synthèse de LPA (Figure 2). Or, dans les conditions normales, le PA est peu abondant et se trouve majoritairement au niveau du feuillet interne de la membrane plasmique. Néanmoins, dans certaines conditions inflammatoires, les membranes de certaines cellules (plaquettes, érythrocytes) peuvent subir de profonds remaniements (diffusion des phospholipides d’une couche à l’autre de la membrane ou flip-flop, production de microvésicules) rendant le PA accessible aux sPLA2 [ 15].

Certains lysophospholipides comme la lysophosphatidylcholine (lyso-PC) peuvent être hydrolysés en LPA par une activité lysophospholipase D (lysoPLD) (Figure 2). Le lyso-PC est retrouvé en abondance (lié à l’albumine ou à des lipoprotéines) dans les liquides biologiques et est synthétisé à partir de la phosphatidylcholine sous l’action d’une PLA2 ou de la lécithine cholestérol acyltransférase (LCAT) (Figure 2). Une activité lysoPLD soluble (s-lysoPLD) a été mise en évidence dans le plasma sanguin [ 16], ainsi que dans des milieux de culture d’adipocytes [ 17]. L’enzyme responsable de cette activité a récemment été purifiée et identifiée [ 18, 19]. C’est une ecto-nucléotide pyrophosphatase phosphodiestérase de type II, également appelée autotaxine (ATX). Il s’agit d’une protéine soluble de 125 kDa qui serait ancrée dans la membrane plasmique par son extrémité aminoterminale, et libérée dans le milieu extracellulaire par clivage protéolytique (Figure 3). Dans sa partie extracellulaire, l’ATX possède un site catalytique, initialement impliqué dans l’hydrolyse de liaisons phosphodiesters et pyrophosphates de substrats comme l’ATP ou l’ADP [ 20]. Les ARN messagers de l’ATX sont retrouvés dans plusieurs tissus dont le tissu adipeux où ils sont particulièrement abondants [19].

Figure 3. Structure et activité lysophospholipase D de l’autotaxine. L’autotaxine (ATX) est une ecto-nucléotide pyrophosphatase phosphodiestérase de type II. Il s’agit d’une protéine de 125 kDa ancrée dans la membrane par son extrémité aminoterminale, et libérée dans le milieu extracellulaire par clivage protéolytique. Dans sa partie extracellulaire, l’ATX possède un site catalytique, initialement impliqué dans l’hydrolyse de liaisons phosphodiesters et pyrophosphates de substrats comme l’ATP ou d’ADP, et qui transforme la lysophosphatidylcholine (LPC) en acide lysophosphatidique (LPA).

Figure 3. Structure et activité lysophospholipase D de l’autotaxine. L’autotaxine (ATX) est une ecto-nucléotide pyrophosphatase phosphodiestérase de type II. Il s’agit d’une protéine de 125 kDa ancrée dans la membrane par son extrémité aminoterminale, et libérée dans le milieu extracellulaire par clivage protéolytique. Dans sa partie extracellulaire, l’ATX possède un site catalytique, initialement impliqué dans l’hydrolyse de liaisons phosphodiesters et pyrophosphates de substrats comme l’ATP ou d’ADP, et qui transforme la lysophosphatidylcholine (LPC) en acide lysophosphatidique (LPA).

Parallèlement à sa synthèse, le LPA subit également un catabolisme intense. La très grande majorité (plus de 90 %) de son hydrolyse (donc de son inactivation) correspond à sa déphosphorylation par des lipide phosphate phosphohydrolases (LPP). Il s’agit de phosphatases dont le site catalytique est orienté vers la face externe de la membrane plasmique [ 21, 22].

En général, les effets cellulaires engendrés par le LPA sont spécifiques et remplissent les critères d’une transmission par des récepteurs : concentration efficace de l’ordre du micromolaire, dose-dépendance, sensibilité à la toxine pertussique. Il faut cependant être prudent sur l’interprétation des résultats obtenus avec des concentrations de LPA supérieures à 10 muM. A ces concentrations, le LPA tend à former un précipité avec le calcium engendrant des effets cellulaires qui pourraient être indépendants de ceux d’un récepteur.

Au moins trois sous-types de récepteurs du LPA ont été identifiés. Il s’agit de récepteurs à sept domaines transmembranaires couplés aux protéines G et appartenant à la famille EDG (endothelial differentiation gene). La nomenclature de cette famille vient récemment d’être modifiée [ 23]. Elle est constituée de trois sous-types de récepteurs du LPA (LPA-1, -2, -3) et de cinq sous-types de récepteurs d’un autre phospholipide bioactif, la sphingosine-1-phosphate (Tableau 1).

Tableau I. Nomenclature des récepteurs des lysophospholipides. IUPHAR : international union of pharmacology ; LPA : acide lysophosphatidique ; S1P : sphingosin-1-phosphate ; vzg : ventricular zone gene ; Edg : endothelial differentiation gene ; ngr : nerve growth factor regulated G protein-coupled receptor.

Tableau I. Nomenclature des récepteurs des lysophospholipides. IUPHAR : international union of pharmacology ; LPA : acide lysophosphatidique ; S1P : sphingosin-1-phosphate ; vzg : ventricular zone gene ; Edg : endothelial differentiation gene ; ngr : nerve growth factor regulated G protein-coupled receptor.

Les voies de transduction du signal mises en jeu par l’activation des récepteurs du LPA sont étroitement liées à la nature des protéines G auxquelles ils sont couplés [ 24]. Grâce à leur couplage à la protéine Gi (inhibitrice), les trois sous-types de récepteur conduisent à l’activation des MAPK (mitogen activated protein kinases) et des PI3K (phosphatidyl inositol 3-kinase). Ces activations, qui peuvent être directes ou mettre en jeu la transactivation de récepteurs de facteurs de croissance comme celui de l’EGF (epidermal growth factor) [ 25], sont impliquées dans les effets mitogéniques et antiapoptotiques du LPA. Les trois sous-types de récepteur conduisent également à l’activation de la phospholipase C et à l’augmentation du calcium intracellulaire via un couplage à la protéine Gq. Seuls les récepteurs LPA1 et LPA2 conduisent à une inhibition de l’adénylate cyclase via un couplage à la protéine Gi. Le récepteur LPA3 entraîne au contraire une activation de l’adénylate cyclase, probablement grâce à un couplage à la protéine Gs (stimulatrice). Les récepteurs LPA1 et LPA2 conduisent également à l’activation de la contraction de l’actomyosine grâce à leur couplage à la protéine G13 et à l’activation de la GTPase Rho. Cette voie de transduction est impliquée dans les différents effets du LPA sur la motilité et l’adhérence cellulaire. Le couplage des récepteurs LPA1 et LPA2 à la protéine G13 peut également conduire à la régulation de la transcription de certains gènes possédant un SRE (serum responsive element) dans leur promoteur. L’invalidation des récepteurs LPA1 et LPA2 a été réalisée par recombinaison homologue chez la souris [ 26, 27]. Alors que les souris invalidées pour le récepteur LPA2 ne présentent pas de phénotype particulier, les souris invalidées pour le récepteur LPA1 présentent une mortalité néonatale importante (50 %) liée à une perturbation de l’olfaction et une réduction du comportement de succion chez les nouveau-nés. A l’âge adulte, les souris survivantes sont de plus petite taille mais se reproduisent normalement. Sur la base de ces observations, l’impact majeur du récepteur LPA1 semble se situer aux phases précoces du développement néonatal. La double invalidation des récepteurs LPA1 et LPA2 ne génère pas de phénotype essentiellement différent de l’invalidation du seul récepteur LPA1 [27]. Cependant, l’analyse de la sensibilité au LPA de fibroblastes issus d’embryons de ces souris, montre que la double invalidation LPA1/LPA2 est nécessaire pour entraîner une perte complète de l’effet du LPA sur certaines réponses cellulaires, suggérant une redondance entre les deux sous-types. 

Un nombre croissant d’études in vitro suggère que le LPA produit dans le milieu extracellulaire pourrait être impliqué dans l’étiologie de certaines maladies (maladies cardio-vasculaires, cancers, obésité). Les protéines récemment identifiées impliquées dans l’activité biologique (récepteurs) ou la production (enzymes de synthèse et de dégradation) du LPA, constituent autant de cibles pharmacologiques ou transgéniques qui devraient permettre de déterminer l’implication physiopathologique du LPA in vivo.