Les récepteurs nucléaires (RN) forment une grande famille de facteurs de transcription impliqués dans de nombreux processus physiologiques fondamentaux tels que le développement, l’homéostasie, le métabolisme ou la reproduction. Ces récepteurs contrôlent l’expression de gènes cibles en recrutant différents types de corégulateurs transcriptionnels qui agissent, généralement sous forme de complexes multiprotéiques, en modulant l’efficacité d’initiation de la transcription ou la structure de la chromatine [ 1]. Le remodelage chromatinien par ces cofacteurs implique différents types d’activités enzymatiques (ATPases, acétylases/désacétylases, méthylases…) capables de modifier le positionnement des nucléosomes ou de produire des signaux de reconnaissance pour différentes protéines régulatrices (code des histones). Le rôle physiologique d’un certain nombre de ces corégulateurs transcriptionnels a été analysé par invalidation du gène correspondant chez la souris, révélant selon les cas une létalité embryonnaire ou une diminution de la réponse hormonale dans certains tissus cibles. Par ailleurs, dans certaines situations pathologiques, en particulier lors de la transformation cancéreuse, ces gènes subissent différents types d’altérations (amplification génique, mutations, translocations…) qui peuvent participer au dérèglement de fonctions cellulaires contrôlées par les RN.

RIP140 (receptor interacting protein of 140 kDa), également connu sous l’appellation NRIP1 (nuclear receptor interacting protein 1), a été l’un des premiers cofacteurs transcriptionnels humains des récepteurs hormonaux nucléaires à être caractérisé. L’ADNc correspondant a été isolé il y a dix ans dans le laboratoire de Malcolm Parker à Londres (Royaume-Uni) [ 2]. L’approche utilisée reposait sur un criblage d’une banque d’expression d’ADNc établie à partir de cellules de cancer du sein, l’hybridation ayant été réalisée à l’aide d’une sonde protéique radiomarquée correspondant au domaine de liaison du ligand du récepteur αdes œstrogènes (REα), en présence d’œstrogènes. Quelques années plus tard, l’ADNc de RIP140 a également été isolé chez la souris par une approche de double hybride dans la levure [ 3]. À l’heure actuelle, on peut obtenir, dans les banques de données, les séquences des ADNc de RIP140 de plusieurs espèces (rat, poulet, xénope, poisson-zèbre et fugu).

L’analyse des séquences nucléotidiques a malheureusement été peu informative sur les différents domaines structuraux présents dans la protéine RIP140. On savait que plusieurs régions de la protéine permettaient son interaction in vitro avec les RN dans leur forme activée par l’hormone [ 4]. L’identification de la séquence LxxLL comme motif consensus minimal d’interaction spécifique avec les RN [ 5] a, par la suite, révélé que RIP140 contenait 9 de ces motifs, riches en leucine, répartis sur toute la molécule (Figures 1A et B). Ce nombre particulièrement élevé de motifs LxxLL est une première particularité de ce cofacteur, lui offrant ainsi une grande diversité dans le mode de recrutement par les RN. RIP140 interagit en effet avec de nombreux récepteurs, tels que le REalpha, le récepteur des hormones thyroïdiennes (TR), des rétinoïdes et réxinoïdes (RAR, RXR) [2–4] ou des glucocorticoïdes [ 6], et il est également capable de se fixer à d’autres facteurs de transcription, comme le récepteur de l’aryl-hydrocarbone (AhR) [ 7] et, plus récemment, c-jun [ 8].

Figure 1. Structure et localization de la proteine RIP140.A. Structure de RIP140. Les motifs LxxLL permettant l’interaction hormonodépendante avec les RN apparaissent sous forme de boîtes rouges. B. Alignement des séquences primaires des neuf motifs LxxLL présents dans la protéine RIP140. C. Localisation subcellulaire de RIP140. L’image a été obtenue par microscopie confocale sur des cellules COS-1 transfectées avec un vecteur d’expression codant pour une protéine chimère correspondant à RIP140 fusionné à la YFP (yellow fluorescent protein) (d’après [ 23]).

Figure 1. Structure et localization de la proteine RIP140.A. Structure de RIP140. Les motifs LxxLL permettant l’interaction hormonodépendante avec les RN apparaissent sous forme de boîtes rouges. B. Alignement des séquences primaires des neuf motifs LxxLL présents dans la protéine RIP140. C. Localisation subcellulaire de RIP140. L’image a été obtenue par microscopie confocale sur des cellules COS-1 transfectées avec un vecteur d’expression codant pour une protéine chimère correspondant à RIP140 fusionné à la YFP (yellow fluorescent protein) (d’après [ 23]).

Comme pour beaucoup de corégulateurs transcriptionnels des RN, l’expression de l’ARNm de RIP140 est ubiquitaire. L’analyse de l’expression du transcrit dans différents tissus chez la souris a montré une expression élevée dans des organes cibles des hormones tels que la glande mammaire, la prostate ou les ovaires [ 9].

Dès l’identification de RIP140, il avait été noté que les œstrogènes augmentaient l’accumulation de la protéine dans les lignées cancéreuses mammaires [ 10]. Cette régulation, également observée au niveau de l’ARNm, semble résulter d’une stimulation directe de la transcription du gène RIP140 par les récepteurs des œstrogènes [ 11]. De manière intéressante, les rétinoïdes augmentent aussi l’expression de l’ARNm de RIP140 dans différentes lignées cancéreuses humaines [ 12]. Par ailleurs, l’accumulation de l’ARNm est stimulée par les gonadotrophines au niveau de la granulosa ovarienne [ 13]. Chez l’homme, le gène RIP140 est localisé sur le chromosome 21 (21q11.2), dans une région pauvre en gènes associée au syndrome de Down et à une forme d’apparition précoce de la maladie d’Alzheimer [ 14]. La présence d’un chromosome surnuméraire à l’origine du syndrome de Down semble être associée à une modification de l’expression de RIP140 [ 15], mais l’implication dans la pathologie de la trisomie 21 reste à ce jour hypothétique.

Concernant l’expression de la protéine RIP140, sa détection par immunofluorescence montre une localisation nucléaire sous forme ponctuée [2]. Le même type de marquage est obtenu en surexprimant la protéine étiquetée par un marqueur fluorescent (Figure 1C) [ 16]. L’utilisation de mutants de délétion [ 17] a révélé que cette localisation sous forme de petits foyers nucléaires nécessite une séquence de 40 acides aminés (coordonnées 431 à 472 de la protéine). Par ailleurs, un changement de localisation apparaît lors de la coexpression de la protéine 14-3-3, qui délocalise RIP140 dans le cytoplasme [16].

Le rôle de RIP140 en tant que répresseur transcriptionnel de la transactivation hormonodépendante de nombreux RN est maintenant clairement établi [2, 3, 8]. La mise en évidence de cette activité répressive renforce le côté atypique de ce cofacteur, puisque les paramètres de sa liaison aux récepteurs (interaction, en présence d’agoniste, avec un récepteur actif sur le plan transcriptionnel) laissaient supposer que RIP140 agisse comme un coactivateur transcriptionnel. Dans le cas du REα, l’effet répresseur de RIP140 a également été observé lorsque le récepteur est recruté de manière indirecte par des interactions protéine-protéine impliquant le complexe AP-1 [8]. De manière intéressante, RIP140 affecte également les réponses hormonales négatives, puisqu’il inhibe la répression par les glucocorticoïdes [6] ou les œstrogènes [ 18] exercée respectivement sur les promoteurs des gènes de la collagénase ou du TNFα.

Il faut cependant noter que, dans certaines situations, RIP140 règle positivement la transactivation des RN. Plusieurs études ont en effet rapporté que la surexpression de RIP140 augmente l’activité transcriptionnelle de différents RN (récepteurs des œstrogènes, de l’acide rétinoïque ou des glucocorticoïdes) chez S. cerevisiae [ 19]. Dans les cellules de mammifères, un effet activateur de RIP140 a également été décrit sur l’activité d’une forme mutée du récepteur des œstrogènes [ 20].

Le contrôle négatif exercé par RIP140 au niveau transcriptionnel implique des mécanismes complexes faisant intervenir différents médiateurs. Plusieurs travaux ont initialement proposé que l’activité inhibitrice de RIP140 découlait de sa capacité à entrer en compétition avec les coactivateurs transcriptionnels pour une même interface d’interaction sur le domaine de liaison de l’hormone des RN. À titre d’exemple, il a été montré que la liaison hormonodépendante de SRC-1 (steroid receptor coactivator) sur la partie carboxyterminale du récepteur PPARγ (peroxisome proliferator-activated receptor) est inhibée par un excès de RIP140, entraînant le blocage de l’effet positif de SRC-1 sur la transactivation du récepteur [ 21].

Cependant, la mise en évidence d’une activité répressive intrinsèque de RIP140 a conduit à l’identification de plusieurs domaines transrépresseurs capables de recruter différents médiateurs pouvant participer à la régulation négative de la transcription (Figure 2). Les premiers partenaires identifiés ont été les histones désacétylases (HDAC). La région aminoterminale de RIP140 (acides aminés 27 à 199) est capable de recruter in vitro les HDAC de classe I (HDAC1, 2 et 3) ou de classe II (HDAC5) [ 22, 23]. Cependant, bien qu’une activité enzymatique HDAC ait été retrouvée associée à RIP140, l’utilisation d’inhibiteurs de cette activité, comme la trichostatine A, donne des résultats variables quant à l’effet répressif exercé par RIP140 qui est, selon les cas, aboli [22] ou conservé [23, 24].

Figure 2. Domaines répresseurs et partenaires de RIP140. Les quatre domaines répresseurs identifiés sont indiqués en gris, avec leurs coordonnées en acides aminés. Les régions permettant le recrutement des histones désacétylases (HDAC) et des C-terminal binding proteins (CtBP) sont notées. Le domaine central possède deux motifs PIxLS d’interaction avec les CtBP (boîtes rouges). Les corépresseurs participant à la répression exercée par les deux domaines carboxyterminaux restent à ce jour à caractériser. L’astérisque représente la lysine 446, dont l’acétylation contrôle le recrutement des CtBP.

Figure 2. Domaines répresseurs et partenaires de RIP140. Les quatre domaines répresseurs identifiés sont indiqués en gris, avec leurs coordonnées en acides aminés. Les régions permettant le recrutement des histones désacétylases (HDAC) et des C-terminal binding proteins (CtBP) sont notées. Le domaine central possède deux motifs PIxLS d’interaction avec les CtBP (boîtes rouges). Les corépresseurs participant à la répression exercée par les deux domaines carboxyterminaux restent à ce jour à caractériser. L’astérisque représente la lysine 446, dont l’acétylation contrôle le recrutement des CtBP.

RIP140 possède par ailleurs deux motifs (PIDLS et PINLS, dans la région centrale de la molécule) lui permettant de recruter les protéines CtBP1 [ 25] et CtBP2 [23, 24], également décrites comme des médiateurs de régulations transcriptionnelles négatives. Tout un ensemble d’observations suggère cependant que le recrutement des CtBP ne peut expliquer qu’une partie de la transrépression du cofacteur RIP140 qui est, par exemple, toujours mesurable dans des fibroblastes embryonnaires issus de souris dont les gènes CtBP1 et CtBP2 ont pourtant été invalidés [23, 24]. Il est néanmoins possible que l’implication des CtBP varie selon les situations (contexte cellulaire, promoteur considéré…) et selon les modifications post-traductionnelles des différents partenaires. En effet, RIP140 est une protéine acétylée, et il a été montré que l’acétylation de la lysine 446 diminuait fortement son interaction avec CtBP1 [25].

Enfin, deux autres domaines situés dans la partie carboxyterminale de RIP140 (Figure 2) ont été récemment identifiés [23, 24]. Ces deux régions possèdent une activité répressive intrinsèque très marquée, indépendante des HDAC et des CtBP. Différentes approches sont en cours afin d’identifier les médiateurs impliqués dans cette transrépression.

Le rôle biologique exercé par RIP140 a été abordé par invalidation de son gène chez la souris, la quasi-totalité de la séquence codante ayant été remplacée par le gène lacZ [13]. Cette approche laisse entrevoir des implications de RIP140 dans le contrôle hormonal de différents processus fondamentaux (Figure 3).

Figure 3. Effets biologiques de RIP140. Rôles biologiques de RIP140, avec les boucles de régulation au niveau des cellules cancéreuses en réponse aux œstrogènes (œstradiol, ou E2) ou à l’acide rétinoïque (RA) (RE : récepteur des œstrogènes, RAR : récepteur de l’acide rétinoïque). Au niveau des ovaires, l’absence d’ovulation pourrait révéler une implication de RIP140 dans la régulation, par les gonadotrophines, de l’expression du gène codant pour la cyclo-oxygénase COX-2, dont l’invalidation conduit également à un phénotype anovulatoire [ 27]. Le rôle de RIP140 au niveau du tissu adipeux blanc est également mentionné, avec la régulation de certaines enzymes de la lipogenèse comme l’acide gras synthétase, ainsi que des gènes CPT1b (carnitine palmitoyltransferase 1b) et UCP-1 (uncoupling protein-1, ou thermogénine), qui pourrait découler d’une perte de la répression de l’activité des récepteurs PPARdelta (peroxisome proliferator-activated receptor) chez les souris dont le gène RIP140 a été invalidé (souris RIPKO).

Figure 3. Effets biologiques de RIP140. Rôles biologiques de RIP140, avec les boucles de régulation au niveau des cellules cancéreuses en réponse aux œstrogènes (œstradiol, ou E2) ou à l’acide rétinoïque (RA) (RE : récepteur des œstrogènes, RAR : récepteur de l’acide rétinoïque). Au niveau des ovaires, l’absence d’ovulation pourrait révéler une implication de RIP140 dans la régulation, par les gonadotrophines, de l’expression du gène codant pour la cyclo-oxygénase COX-2, dont l’invalidation conduit également à un phénotype anovulatoire [ 27]. Le rôle de RIP140 au niveau du tissu adipeux blanc est également mentionné, avec la régulation de certaines enzymes de la lipogenèse comme l’acide gras synthétase, ainsi que des gènes CPT1b (carnitine palmitoyltransferase 1b) et UCP-1 (uncoupling protein-1, ou thermogénine), qui pourrait découler d’une perte de la répression de l’activité des récepteurs PPARdelta (peroxisome proliferator-activated receptor) chez les souris dont le gène RIP140 a été invalidé (souris RIPKO).

De nombreux processus physiologiques fondamentaux sont contrôlés par des stimulus hormonaux et relayés par les RN. En participant à la régulation fine de l’activité transcriptionnelle de ces récepteurs hormonaux, le cofacteur RIP140 joue vraisemblablement un rôle important en physiopathologie humaine. L’invalidation du gène RIP140 chez la souris conduit à des phénotypes proches de ceux obtenus après invalidation des gènes codant pour les récepteurs REβ ou PR (phénotype ovarien) ou ERRα (tissu adipeux), suggérant des répercussions physiopathologiques majeures des différentes interactions transcriptionnelles observées entre RIP140 et les RN.

L’implication de RIP140 lors de l’ovulation ou dans la régulation du stockage des graisses laisse entrevoir un intérêt évident, comme marqueur biologique, dans certaines formes de stérilités inexpliquées ou d’obésité. Par ailleurs, la localisation chromosomique du gène n’exclut pas un rôle dans le syndrome associé à la trisomie 21. Enfin, des approches visant à surexprimer RIP140 par transgenèse chez la souris déboucheront peut-être sur de nouvelles fonctions biologiques encore inconnues.

Il est maintenant nécessaire de mettre en œuvre des études cliniques afin de préciser les dérèglements éventuels de l’expression de ce cofacteur dans ces différentes situations pathologiques. Plusieurs études d’analyse globale du transcriptome humain ont déjà donné des informations et des pistes intéressantes concernant le diabète au cours de la grossesse [ 32] ou certains types de cancers [ 33]. Ces résultats devraient pouvoir être confirmés au niveau moléculaire par des expériences réalisées en lignées cellulaires, permettant de définir de nouveaux partenaires de RIP140 et/ou de nouvelles voies de régulation au niveau transcriptionnel ou post-transcriptionnel.