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Med Sci (Paris). 2009 February; 25(2): 138–140.
Published online 2009 February 15. doi: 10.1051/medsci/2009252138.

Les cytokines préviennent les tumeurs via un mécanisme de sénescence cellulaire

Marie-France Gaumont-Leclerc and Gerardo Ferbeyre*

Département de Biochimie, Université de Montréal, CP 6128, Succursale Centre-ville, Montréal, Québec, H3C 3J7 Canada
Corresponding author.

MeSH keywords: Vieillissement de la cellule, Chimiokines, Cytokines, Humains, Interleukines, Protéines et peptides de signalisation intracellulaire, Tumeurs, Transduction du signal

 

Trois articles récents démontrent que la sécrétion de cytokines joue un rôle central dans l’établissement de la sénescence réplicative et de celle qui est induite par des oncogènes. Ces articles permettent de mieux comprendre comment le processus de sénescence contribue à prévenir la prolifération anarchique de cellules portant des mutations pro-oncogéniques et à inhiber le développement des cancers.

La sénescence cellulaire est un mécanisme par lequel les cellules qui ont subi un stress oncogénique sortent du cycle cellulaire [ 12] (→). Originellement décrite comme l’aboutissement de la mise en culture des lignées primaires de fibroblastes humains, elle représente un arrêt stable du cycle cellulaire dans lequel les cellules demeurent métaboliquement actives. Plusieurs changements, tant morphologiques que métaboliques, accompagnent l’état de sénescence : par exemple, l’élargissement de la cellule, la vacuolisation du cytoplasme, une activité accrue de la β-galactosidase à pH acide, ainsi que des changements caractéristiques dans le profil d’expression génétique. Bien que certains de ces changements soient liés au contrôle de la progression du cycle cellulaire, tels que l’activation de p53 ou l’augmentation du taux des inhibiteurs des complexes CDK/cycline comme p16INK4a et p21CIP1, les cellules sénescentes sécrètent davantage de protéines, notamment des protéases, des cytokines, des chimiokines et des facteurs de croissance [ 1].

(→)Voir l’article d’Oliver Bischof et al., page 153 de ce numéro

L’étude de la sénescence cellulaire trouve sa pleine justification depuis que plusieurs publications ont confirmé qu’elle représentait un mécanisme de suppression tumorale comme on a pu le constater dans plusieurs types de tumeurs bénignes [ 2]. Il est maintenant clair que la sénescence peut être induite tant ex vivo (cellules en culture) qu’in vivo par une grande variété de stimulus incluant les dommages à l’ADN, le raccourcissement des télomères (sénescence réplicative) et les mutations activant les oncogènes [1].

De façon intéressante, une accumulation de cellules sénescentes a été mise en évidence dans des tissus de rongeurs [ 3] et de primates âgés [ 4]. Leur perte de potentiel réplicatif pourrait expliquer la perte de la capacité de régénération des tissus perdus lors du vieillissement. Fait important, ces cellules sénescentes pourraient compromettre l’homéostasie tissulaire, via des molécules sécrétées qui agiraient sur les cellules environnantes [1, 5].

Identification de molécules sécrétées par les cellules sénescentes : le rôle de IGBP7

Trois articles publiés récemment dans la revue Cell par des groupes indépendants ont confirmé l’importance des molécules sécrétées par les cellules sénescentes. Deux des groupes ont utilisé des approches mettant à profit la perte de fonction liée à la présence d’un petit ARN interférent pour identifier des protéines essentielles à la sénescence induite par les oncogènes [ 6] ou à la sénescence réplicative [ 7]. En revanche, l’étude de Kuilman et al. a analysé les variations transcriptionelles entre les cellules qui ont subi un processus de sénescence provoqué par l’oncogène BRAFV600E et des cellules contrôles [ 8]. Soulignons que Wajapeyee et al. [6] et Kuilman et al. [8] ont tous deux utilisé l’oncogène BRAF comme inducteur de la sénescence. BRAF1,, un oncogène qui active la voie des MAP kinases, constitue un modèle très pertinent puisqu’on le retrouve tant dans les lésions mélanocytiques bénignes que dans les mélanomes chez l’humain [2]. D’autre part, Acosta et al. [7] ont utilisé un modèle de cellules qui entrent en sénescence quand leurs télomères deviennent très courts (sénescence réplicative) et, par la suite, ont confirmé l’importance des facteurs sécrétés identifiés dans la sénescence déclenchée par l’oncogène ras. L’oncogène ras active aussi la voie des MAP kinases et on le détecte dans 30 % des tumeurs humaines.

Wajapeyee et al. [6] ont identifié plusieurs produits de gènes essentiels au déclenchement de la sénescence par BRAF notamment IGFBP7 (insulin growth factor binding protein 7), une protéine sécrétée qui est associée à la sénescence dans les cellules du cancer du sein. Ils ont aussi confirmé que l’IGFBP7 était suffisante pour bloquer la prolifération de mélanocytes primaires et amorcer la sénescence. De plus, IGFBP7 provoque l’apoptose dans les cellules provenant de mélanomes. En revanche, ils ont démontré une corrélation inverse entre l’expression d’IGFBP7 dans les cellules tumorales et l’apoptose des cellules lorsqu’elles sont exposées à cette protéine. Les cellules exprimant un mutant activé de Ras ou de BRAF ne produisent pas d’IGFBP7 et sont très sensibles au déclenchement de la sénescence par cette cytokine. À l’inverse, les cellules ne possédant que l’allèle normal de Ras ou de BRAF expriment IGFBP7 et n’y sont pas très sensibles. Ces résultats peuvent s’expliquer par le fait que les cellules tumorales qui expriment BRAF activé ont perdu la capacité de produire IGFBP7 lors de la progression tumorale mais qu’elles y restent sensibles. Tel n’est pas le cas des cellules tumorales qui ne dépendent pas de BRAF activé : elles ne sont pas affectées par IGFBP7. Ces résultats suggèrent que BRAF pourrait déclencher la sénescence par le biais d’une stimulation de type autocrine/paracrine médiée par IGFBP7 qui bloque ensuite la prolifération cellulaire stimulée par BRAF activé en établissant une boucle d’autorégulation négative.

Chimiokines et interleukines

Acosta et al. [7] ont obtenu des résultats suggérant que la signalisation par les chimiokines liant le récepteur CXCR2, surexprimé dans les cellules dans lesquelles le processus de sénescence est déclenché en réponse à l’activation de Ras, renforce l’arrêt de la prolifération. Ils ont aussi démontré que les chimiokines contribuent à l’altération de l’ADN en facilitant l’augmentation de la production des espèces oxygénées réactives. Ce mécanisme pourrait être commun au mode d’action de plusieurs cytokines. En effet, notre équipe avait démontré en 2006 que l’interféron β peut provoquer la sénescence cellulaire en favorisant la production des espèces oxygénées réactives [ 9]. D’autres études sont nécessaires pour établir que ce mode d’action peut être partagé par d’autres cytokines et qu’il pourrait donc être généralisé.

Les résultats de Kuilman et al. [8] confirment eux aussi le rôle important qu’exercent des produits sécrétés, ici les cytokines inflammatoires, dans l’instauration de la sénescence par les oncogènes. Les chercheurs de ce groupe ont conçu un modèle en deux temps selon lequel le choc oncogénique entraînerait initialement une augmentation des niveaux d’IL (interleukine)-6, dont dépendrait l’augmentation de la production d’IL-8. Ces deux cytokines sont toutefois essentielles à l’amorce de la sénescence, puisque l’inhibition de l’expression de l’une des deux suffit à éviter l’entrée en sénescence. Les résultats de Kuilman et d’Acosta établissent également que le facteur de transcription C/EBPβ (CCAAT/enhancer binding protein β) activé par Ras ou MEK, joue un rôle clé dans la régulation transcriptionnelle des protéines sécrétées associées à la sénescence. Le fait que C/EBPβ induise l’expression de l’IL-6 et que cette cytokine déclenche l’expression de C/EBPβ alimente une boucle d’activation positive qui contribue à maintenir l’état de sénescence. Toutefois, un rôle tout aussi important pourrait être de transmettre la sénescence aux cellules avoisinantes qui ont aussi subi un stress oncogénique mais encore trop faible pour déclencher seul le mécanisme de sénescence (Figure 1).

Bien que des différences existent entre la sénescence réplicative et la sénescence provoquée par les oncogènes, les deux processus présentent plusieurs points communs : tous deux sont instaurés par la sécrétion de plusieurs cytokines et par l’activation d’un processus de dommages à l’ADN [ 10]. L’élucidation du mécanisme qui active l’expression des cytokines en réponse aux dommages causés à l’ADN constituerait une belle découverte dans le fascinant domaine de la sénescence cellulaire. Quoi qu’il en soit, les percées récentes permettent déjà de mieux comprendre le mécanisme de sénescence ; elles invitent, en tout cas, à envisager de recourir aux cytokines dans la mise au point de stratégies anticancéreuses.

 
Footnotes
1 Il y a trois protéines Raf connues : A-Raf, B-Raf (BRAF) et C-Raf. BRAF code pour une kinase à sérine/thréonine, qui est un acteur clé de la voie des MAPK relayant les signaux de l’oncogène Ras. Les mutations de BRAF ont été décrites dans les tumeurs de type mélanome et divers carcinomes, et la mutation la plus fréquente touche l’exon 15 V600E
References
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2.
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3.
Sedelnikova OA, Horikawa I, Zimonjic DB, et al. Senescing human cells and ageing mice accumulate DNA lesions with unrepairable double-strand breaks. Nat Cell Biol 2004; 6 : 168–70.
4.
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Ferbeyre G, Lowe SW. The price of tumour suppression ? Nature 2002; 415 : 26–7.
6.
Wajapeyee N, Serra RW, Zhu X, et al. Oncogenic BRAF induces senescence and apoptosis through pathways mediated by the secreted protein IGFBP7. Cell 2008; 132 : 363–74.
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Acosta JC, O’Loghlen A, Banito A, et al. Chemokine signaling via the CXCR2 receptor reinforces senescence. Cell 2008; 133 : 1006–18.
8.
Kuilman T, Michaloglou C, Vredeveld LC, et al. Oncogene-induced senescence relayed by an interleukin-dependent inflammatory network. Cell 2008; 133 : 1019–31.
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Moiseeva O, Mallette FA, Mukhopadhyay UK, et al. DNA damage signaling and p53-dependent senescence after prolonged beta-interferon stimulation. Mol Biol Cell 2006; 17 : 1583–92.
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11.
Ferbeyre G. Barriers to Ras transformation. Nat Cell Biol 2007; 9 : 483–5.
12.
Bischof O, Dejean A, Pineau P. Une re-vue de la sénescence cellulaire dans la suppression et la promotion tumorale. Med Sci (Paris) 2009; 25 : 153–60.