Conservée durant l’évolution des espèces, la signalisation Notch est essentielle au cours du développement des invertébrés et des vertébrés. Sa capacité à contrôler les interactions cellule-cellule ainsi que la prolifération, la différenciation ou l’apoptose de divers types cellulaires lui confère un rôle majeur dans la genèse de nombreuses cellules notamment nerveuses, musculaires, sanguines, vasculaires, cardiaques, intestinales ou pancréatiques. En dehors de son rôle durant le développement, la signalisation Notch participe à l’homéostasie cellulaire dans la plupart des tissus. Ainsi, son activation favorise la synthèse du glucose et des lipides dans le foie, induit une résistance à l’insuline dans le tissu adipeux ou la polarisation des macrophages de type pro-inflammatoire dans le système immunitaire. Elle renforce aussi la quiescence des cellules souches adultes dans le muscle squelettique et le système nerveux. Enfin, induite dans la majorité des tumeurs, elle participe à la résistance des cellules cancéreuses aux agents cytotoxiques. Dans cette revue, nous nous focaliserons sur l’implication de la signalisation Notch dans la régulation des cellules souches neurales (CSN) durant le développement et chez l’adulte, et considérerons son activité dans un contexte physiologique ou pathologique.

Au cours du développement embryonnaire, les CSN sont capables de s’auto-renouveler et de générer les lignages conduisant à la formation des neurones, astrocytes et oligodendrocytes. Il y a quelques décennies, la persistance de CSN dans des régions bien définies du système nerveux central (SNC) adulte fut démontrée et suscita beaucoup d’intérêt car elle offrait des perspectives thérapeutiques prometteuses pour lutter contre les processus dégénératifs du cerveau et de la moelle épinière. La connaissance approfondie des mécanismes moléculaires qui contrôlent la genèse, le maintien et la détermination des CSN est par conséquent d’une importance majeure. Parmi ces mécanismes, on trouve les signalisations Bmp (bone morphogenetic proteins), Wnt, Shh (sonic hedgehog) et Notch [46] (→). La signalisation Bmp possède une activité mitogène sur les CSN embryonnaires, mais favorise la quiescence des CSN adultes. La signalisation Wnt, de son côté, induit une activité proliférative sur ces deux types cellulaires. Le morphogène Shh est impliqué dans la mise en place des différents domaines où se localisent les cellules progénitrices dans le système nerveux en développement, puis dans l’établissement et le maintien de ceux où persistent les CSN post-natales et adultes. Comme illustré dans cette revue, la voie Notch orchestre dans le temps la production des neurones et des cellules gliales, et maintient l’état indifférencié des CSN embryonnaires et adultes.

(→) Voir la Nouvelle de D. Angonin et al., m/s n° 11, novembre 2015, page 968

Durant les étapes les plus précoces du développement cérébral, les CSN, appelées à ce stade cellules neuroépithéliales, subissent une série de divisions symétriques (chaque division produisant deux cellules filles identiques) dans la zone ventriculaire. Les cellules neuroépithéliales se différencient ensuite en cellules de la glie radiale qui se divisent de façon asymétrique en générant une cellule de la glie radiale et, soit un neurone immature, soit un progéniteur neural intermédiaire (PNI) de type neuronal ou oligodendrocytaire. À la fin de la période embryonnaire, la plupart des cellules de la glie radiale se différencient en astrocytes. Les cellules indifférenciées continuent à produire des PNI ou se convertissent en cellules épendymaires ou en CSN adultes [1].

Dans le cerveau adulte, deux principales régions contiennent des CSN. Il s’agit de la zone sous-ventriculaire (ZSV) bordant la paroi des ventricules latéraux et de la zone sous-granulaire (ZSG) du gyrus denté de l’hippocampe [1, 46] (→). Les CSN adultes constituent une population hétérogène de cellules partageant avec les astrocytes leurs caractéristiques ultrastructurales et antigéniques, notamment l’expression de la protéine fibrillaire acide de la glie (GFAP, glial fibrillary acidic protein). Dans la ZSV, on distingue des CSN (encore appelées cellules de type B) quiescentes ou du moins à division très lente, et des CSN activées qui expriment le récepteur du facteur de croissance épidermique (EGFR, epidermal growth factor receptor). Ces dernières se divisent activement, pour la plupart de façon symétrique, et génèrent des progéniteurs transitoires à amplification rapide (TAP, transient amplifying progenitors) aussi appelés cellules de type C [2]. La descendance des TAP est essentiellement constituée de progéniteurs neuronaux (neuroblastes ou cellules de type A) et oligodendrocytaires (OPC, oligodendrocyte progenitor cells) qui migrent respectivement dans les bulbes olfactifs et les passages de fibres proches de la ZSV. La ZSG contient, quant à elle, deux types de CSN de morphologie respectivement radiale (type 1) ou horizontale (type 2a). Ces CSN expriment des marqueurs tels que la nestine, Sox2 (sex determining region Y-box2) et BLBP (brain lipid binding protein). Les cellules de type 2a se divisent plus rapidement et se différencient en cellules de type 2b qui commencent à exprimer les marqueurs de neuroblastes, puis deviennent des neurones matures dans le gyrus denté [3].

Dans des modèles d’ischémie, de démyélinisation ou de lésion corticale développés chez le rongeur, les CSN de la ZSV quittent leur état de quiescence. Les précurseurs produits sont recrutés par la lésion sous forme de neurones, oligodendrocytes ou astrocytes importants pour le processus régénératif. À l’issue de la régénération, une partie des CSN activées retourneront à l’état de quiescence [4, 5]. L’homéostasie du tissu nerveux repose sur l’existence d’un équilibre entre le maintien des cellules souches et leur différenciation en cellules neurales matures. La signalisation Notch est un élément clé de cet équilibre.

Initialement identifiée chez la drosophile en 1914, la signalisation Notch doit son nom à l’existence de petites encoches présentes sur les ailes de la mouche mutante. Cette voie permet une communication à courte distance entre cellules proches. Les signaux Notch interviennent lorsqu’une cellule doit faire un choix entre des programmes développementaux préexistants. Alors qu’un seul récepteur Notch et deux ligands (Delta et Serrate) sont présents chez la drosophile, quatre récepteurs (Notch1-4) et plusieurs ligands dits canoniques, Delta-like (Dll1, Dll3, Dll4) et Jagged (Jag1, Jag2), existent chez les mammifères [6, 7]. Ligands et récepteurs sont des protéines transmembranaires de type I, exprimées par des cellules voisines (Figure 1). Ils possèdent dans leur domaine extracellulaire des motifs EGF (epidermal growth factor) au niveau desquels s’établissent les interactions. D’autres ligands dits non canoniques ont été identifiés, notamment dans le SNC des vertébrés [8], parmi eux F3/contactine [9] ou DNER (delta/notch-like epidermal growth factor-related receptor) [10].

Figure 1. La voie de signalisation Notch. Les protéines pro-neurales Mash1 et Neurogénine 2 (Ngn2), exprimées par la cellule différenciée, induisent l’expression des ligands de Notch qui activent une cascade intracellulaire dans la cellule voisine. L’activation du récepteur par le ligand met en jeu une série de clivages protéolytiques qui débute par une métalloprotéase de type ADAM (a disintegrin and metalloproteinase) et se termine par le complexe γ-sécrétase-présénilline. Ces clivages résultent en la libération du domaine intracellulaire de Notch (NICD, Notch intracellular domain) qui, après translocation dans le noyau, agit en conjonction avec un complexe formé de RBPj (recombination signal binding protein for immunoglobulin kappa j region) et des molécules de type Mastermind (MAML) pour induire l’expression de Hes1 (hairy and enhancer of split 1) et Hes5. Les facteurs de transcription Hes1/5 répriment l’expression des gènes pro-neuraux maintenant la cellule à l’état de cellule pluripotente.

Figure 1. La voie de signalisation Notch. Les protéines pro-neurales Mash1 et Neurogénine 2 (Ngn2), exprimées par la cellule différenciée, induisent l’expression des ligands de Notch qui activent une cascade intracellulaire dans la cellule voisine. L’activation du récepteur par le ligand met en jeu une série de clivages protéolytiques qui débute par une métalloprotéase de type ADAM (a disintegrin and metalloproteinase) et se termine par le complexe γ-sécrétase-présénilline. Ces clivages résultent en la libération du domaine intracellulaire de Notch (NICD, Notch intracellular domain) qui, après translocation dans le noyau, agit en conjonction avec un complexe formé de RBPj (recombination signal binding protein for immunoglobulin kappa j region) et des molécules de type Mastermind (MAML) pour induire l’expression de Hes1 (hairy and enhancer of split 1) et Hes5. Les facteurs de transcription Hes1/5 répriment l’expression des gènes pro-neuraux maintenant la cellule à l’état de cellule pluripotente.

Deux types d’interactions ligands-récepteurs ont été décrits et modélisés [11]. Le ligand exprimé par une cellule peut lier le récepteur présenté par une cellule voisine. On parle alors d’interaction en trans qui conduit à l’activation du récepteur (ou transactivation). Alternativement, l’interaction peut avoir lieu entre ligand et récepteur exprimés par la même cellule. Cette interaction dite en cis ne déclenche aucun signal. On parle dans ce cas de cisinhibition car la cellule présente alors une capacité réduite à détecter les signaux envoyés par une cellule voisine (Figure 2A).

Figure 2. Interaction et distribution des récepteurs Notch et de leurs ligands. A. Notch et son ligand Delta peuvent interagir en trans lorsque les protéines sont exprimées par deux cellules différentes ou en cis lorsque les protéines sont exprimées par la même cellule. L’interaction en trans déclenche une activation de la signalisation Notch dans la cellule réceptrice contrairement à l’interaction en cis. B. Au cours du cycle cellulaire, les noyaux (N/2N) des progéniteurs neuraux sont localisés sur le versant basal du neuroépithélium durant la phase de synthèse de l’ADN (S) et sur le versant apical pendant la phase de mitose (M). La migration nucléaire apico-basale et baso-apicale a lieu respectivement pendant la phase de croissance de la cellule (G1) et de préparation de la mitose (G2). L’expression de Notch est plus élevée du côté apical alors que celle de Delta est plus élevée du côté basal. NICD : Notch intracellular domain.

Figure 2. Interaction et distribution des récepteurs Notch et de leurs ligands. A. Notch et son ligand Delta peuvent interagir en trans lorsque les protéines sont exprimées par deux cellules différentes ou en cis lorsque les protéines sont exprimées par la même cellule. L’interaction en trans déclenche une activation de la signalisation Notch dans la cellule réceptrice contrairement à l’interaction en cis. B. Au cours du cycle cellulaire, les noyaux (N/2N) des progéniteurs neuraux sont localisés sur le versant basal du neuroépithélium durant la phase de synthèse de l’ADN (S) et sur le versant apical pendant la phase de mitose (M). La migration nucléaire apico-basale et baso-apicale a lieu respectivement pendant la phase de croissance de la cellule (G1) et de préparation de la mitose (G2). L’expression de Notch est plus élevée du côté apical alors que celle de Delta est plus élevée du côté basal. NICD : Notch intracellular domain.

L’activation du récepteur Notch par les ligands canoniques se traduit par une séquence d’événements protéolytiques médiés par les protéines ADAM (a disintegrin and metalloproteinase) et γ-sécrétase. À l’issue de cette séquence, le domaine intracellulaire de Notch (NICD, Notch intracellular domain) est transloqué dans le noyau de la cellule réceptrice. En présence des protéines de type Mastermind (MAML, Mam-like proteins), NICD forme un complexe avec la protéine liant l’ADN RBPj (recombination signal binding protein for immunoglobulin kappa j region), tandis que le domaine extracellulaire du récepteur est endocytosé avec le ligand dans la cellule exprimant ce dernier. Le complexe NICD-RBPj active la transcription des gènes cibles de la voie, en particulier les gènes Hes (hairy and enhancer of split) et les gènes associés Hey (hairy and enhancer of split-related with YRPW motif), qui appartiennent à une famille de répresseurs transcriptionnels de la famille bHLH (basic helix-loop-helix). Les protéines Hes/Hey inhibent notamment la transcription des gènes proneuraux tels que Mash1 dans la partie ventrale du cerveau antérieur, et Neurogenin 2 (Ngn2) dans le néocortex, ce qui empêche les cellules progénitrices indifférenciées de s’acheminer vers le processus de différenciation neuronale. Les cellules exprimant un ligand de la signalisation Notch se trouvent donc engagées dans une voie de différenciation tout en maintenant leurs voisines dans un état non différencié via l’activation du récepteur Notch présent sur ces dernières. Ce processus porte le nom d’inhibition latérale (Figure 1). Il nécessite un contrôle étroit assuré par de nombreuses protéines telles que Botch, qui interfère avec la protéolyse et le trafic de Notch [12], les protéines Fezf [13] ou l’oncogène Bcl6 (B-cell lymphoma 6) [14] qui sont impliquées dans la répression des gènes de la famille Hes.

Comprendre le rôle physiologique de la signalisation Notch a nécessité le développement de plusieurs modèles génétiques utilisés comme rapporteurs de son activité. Différentes associations de promoteurs (RBPj, Hes1, Hes5) et de rapporteurs (EGFP [enhanced green fluorescent protein], LacZ [β-galactosidase], EYFP [enhanced yellow fluorescent protein], Venus) ont été réalisées. Les principaux outils génétiques développés et les principales avancées liées à leur utilisation sont présentés dans le Tableau I.

Rôle de Notch dans la différenciation neuronale et l’équilibre entre CSN et progéniteurs

Au cours des phases précoces du développement, la signalisation Notch est impliquée dans le processus de sélection des progéniteurs neuraux. Ainsi, au sein d’une population de progéniteurs communiquant via Notch, seules les cellules régulant négativement cette signalisation deviennent des progéniteurs neuraux, alors que les autres s’orientent vers un destin de cellule épidermique chez la drosophile [15], ou participent au maintien du stock de CSN chez les vertébrés. En accord avec cette activité, la perte du facteur de transcription Hes1, comme l’invalidation de Notch1 ou de RBPj, se traduisent par la diminution du nombre de CSN et l’augmentation prématurée et excessive du nombre de progéniteurs neuraux intermédiaires (PNI) chez les vertébrés [6, 7].

Comme précédemment mentionné, cette activité de la voie Notch porte le nom d’inhibition latérale, plus généralement définie comme un processus par lequel des cellules adjacentes équipotentes établissent une différence d’identité par échange réciproque de signaux inhibiteurs. De façon intéressante, l’inhibition latérale est étroitement associée à une caractéristique bien établie des noyaux des progéniteurs neuraux, leur capacité à se déplacer entre la position basale et apicale du neuroépithélium en fonction de l’étape du cycle cellulaire dans laquelle se trouvent les progéniteurs. Cette migration nucléaire, dite intercinétique, joue un rôle majeur dans la régulation de la neurogenèse via Notch chez le poisson zèbre, comme le suggère l’analyse du mutant Mok chez lequel les mouvements nucléaires sont interrompus tandis qu’un excès de PNI est généré aux dépens des CSN [16]. Les progéniteurs en phase de mitose possèdent un noyau en position apicale et expriment fortement le récepteur Notch. À l’inverse, les progéniteurs en phase de synthèse d’ADN, dont le noyau est localisé en position basale, expriment fortement le ligand Delta de Notch. Ainsi, toutes les cellules constituant le neuroépithélium ont une probabilité équivalente de libérer ou de recevoir un signal Notch. Cette caractéristique disparaît si les mouvements nucléaires sont interrompus (Figure 2B).

Une conséquence de ce mécanisme est l’existence d’une expression oscillatoire de Hes1 (dans la cellule réceptrice du signal Notch) et de Dll1 (dans la cellule émettrice du signal Notch), identifiée in vitro et in vivo dans le télencéphale de souris en développement, au cours de la phase neurogénique (Figure 3A). Hes1 oscille avec une périodicité de 2 heures, assure sa propre régulation et réprime régulièrement l’expression non seulement de Dll1, mais aussi du gène proneural Ngn2 (Neurogenin 2) [6, 7]. Tant que l’expression de Ngn2 oscille, elle active une sélection de gènes parmi lesquels Dll1, mais pas les gènes nécessaires à la différenciation neuronale qui répondent lentement à Ngn2. Lors des divisions asymétriques, la cellule fille dans laquelle l’expression de Dll1 est induite acquiert l’identité de PNI, alors que l’autre conserve l’identité de CSN. Dll1 active Notch présent sur les cellules environnantes dans lesquelles l’expression de Ngn2 et de Dll1 est alors réprimée [17]. Lorsque l’expression de Ngn2 devient stable, elle induit la différenciation neuronale. Cependant, toutes les cellules exprimant Hes1 ne le font pas systématiquement de façon oscillatoire. C’est le cas de la région isthmique (un centre organisateur de l’axe antéropostérieur du cerveau). L’expression non oscillatoire de Hes1, empêchant la production de neurones, a été proposée comme une caractéristique des cellules dormantes ou quiescentes [18]. Le maintien des cellules de la glie radiale HES1⁺ et l’inhibition de la différenciation neuronale sont des activités conservées dans la neurogenèse du cortex cérébral humain, comme l’ont montré des expériences réalisées dans le système expérimental des tranches de néocortex fœtal en culture [19]. Par ailleurs, plus récemment et de façon inattendue, la signalisation Notch s’est révélée capable de contrôler le choix binaire que les cellules doivent accomplir pour s’orienter vers un type neuronal donné. Dans la moelle épinière de souris ou de poisson zèbre, Notch peut ainsi influencer la génération d’interneurones excitateurs ou inhibiteurs en fonction du contexte environnemental [20].

Figure 3. Signalisation Notch et production des neurones, astrocytes et oligodendrocytes au cours du développement embryonnaire. A-1. Dans le télencéphale embryonnaire dorsal, les cellules neuroépithéliales de la zone ventriculaire (ZV) subissent d’abord des divisions symétriques, puis se divisent de façon asymétrique pour donner des neurones ou des progéniteurs neuraux intermédiaires qui migrent respectivement dans la plaque corticale (PC) et la zone sous-ventriculaire (ZSV). Les progéniteurs neuraux intermédiaires continuent à se diviser dans la ZSV pour produire plus de neurones. Les cellules neuroépithéliales deviennent des cellules de la glie radiale dont certaines se différencient en progéniteurs de la ZSV externe (ZSVe), qui émettent un prolongement uniquement vers le versant basal. A-2. Dans les CSN (cellules souches neurales), les oscillations de Hes1 (hairy and enhancer of Split 1) contrôlent celles de Ngn2 (Neurogenin 2). Les oscillations de Dll1 (Delta-like protein 1) sont cycliquement induites par Ngn2 et réprimées par Hes1. Lorsque l’expression de Hes1 disparaît, celle de Ngn2 est induite de façon continue, ce qui déclenche la différenciation neuronale. B. À mi-parcours de la gestation, les cellules neuroépithéliales se divisent de manière asymétrique et génèrent un progéniteur neural intermédiaire de type neuronal et une cellule de la glie radiale. Les progéniteurs neuraux intermédiaires, qui se différencieront ultérieurement en neurones, expriment les ligands de Notch qui vont activer les récepteurs Notch sur la glie radiale avoisinante. Cela permet l’induction de la transcription du facteur NFIA (nuclear factor IA) nécessaire à la déméthylation du promoteur des gènes spécifiques des astrocytes. Le promoteur déméthylé est alors capable de lier STAT3 (signal transducer and activator of transcription 3), qui active la transcription du gène astrocytaire. Alternativement, les cellules de la glie radiale peuvent devenir des CSN adultes de type astrocytaire. C-1. Dans la partie ventrale du tube neural, le domaine pMN (progenitor domain of motoneurons) contient des progéniteurs Olig2+ (rose) qui génèrent successivement des motoneurones (vert) et des oligodendrocytes (orange). Lorsqu’il est exprimé dans le domaine pMN, Jag2 maintient les progéniteurs de la partie latérale de ce domaine dans un état indifférencié, alors que les progéniteurs proches de la ligne médiane qui ne sont pas en contact avec Jag2 se différencient en motoneurones. Pendant cette phase neurogénique, Hes5 induit par Jag2, lui-même contrôlé par le morphogène Sonic Hedgehog (Shh), empêche la différenciation prématurée des progéniteurs de la partie latérale de pMN en cellules oligodendrocytaires. À l’issue de cette phase, l’absence d’expression de Jag2 dans le domaine pMN autorise l’oligodendrogenèse. C-2. Au cours de l’embryogenèse tardive jusqu’au sixième jour post-natal (P6), la voie Notch canonique est activée par le ligand Jag1 et induit la transcription de Hes1 qui empêche la maturation des OPC (oligodendrocyte progenitor cells). Après P6, la voie Notch non canonique est activée par le ligand F3/contactine et induit la transcription du gène codant la glycoprotéine associée à la myéline (MAG [myelin-associated glycoprotein]) et par conséquent la différenciation des OPC.

Figure 3. Signalisation Notch et production des neurones, astrocytes et oligodendrocytes au cours du développement embryonnaire. A-1. Dans le télencéphale embryonnaire dorsal, les cellules neuroépithéliales de la zone ventriculaire (ZV) subissent d’abord des divisions symétriques, puis se divisent de façon asymétrique pour donner des neurones ou des progéniteurs neuraux intermédiaires qui migrent respectivement dans la plaque corticale (PC) et la zone sous-ventriculaire (ZSV). Les progéniteurs neuraux intermédiaires continuent à se diviser dans la ZSV pour produire plus de neurones. Les cellules neuroépithéliales deviennent des cellules de la glie radiale dont certaines se différencient en progéniteurs de la ZSV externe (ZSVe), qui émettent un prolongement uniquement vers le versant basal. A-2. Dans les CSN (cellules souches neurales), les oscillations de Hes1 (hairy and enhancer of Split 1) contrôlent celles de Ngn2 (Neurogenin 2). Les oscillations de Dll1 (Delta-like protein 1) sont cycliquement induites par Ngn2 et réprimées par Hes1. Lorsque l’expression de Hes1 disparaît, celle de Ngn2 est induite de façon continue, ce qui déclenche la différenciation neuronale. B. À mi-parcours de la gestation, les cellules neuroépithéliales se divisent de manière asymétrique et génèrent un progéniteur neural intermédiaire de type neuronal et une cellule de la glie radiale. Les progéniteurs neuraux intermédiaires, qui se différencieront ultérieurement en neurones, expriment les ligands de Notch qui vont activer les récepteurs Notch sur la glie radiale avoisinante. Cela permet l’induction de la transcription du facteur NFIA (nuclear factor IA) nécessaire à la déméthylation du promoteur des gènes spécifiques des astrocytes. Le promoteur déméthylé est alors capable de lier STAT3 (signal transducer and activator of transcription 3), qui active la transcription du gène astrocytaire. Alternativement, les cellules de la glie radiale peuvent devenir des CSN adultes de type astrocytaire. C-1. Dans la partie ventrale du tube neural, le domaine pMN (progenitor domain of motoneurons) contient des progéniteurs Olig2+ (rose) qui génèrent successivement des motoneurones (vert) et des oligodendrocytes (orange). Lorsqu’il est exprimé dans le domaine pMN, Jag2 maintient les progéniteurs de la partie latérale de ce domaine dans un état indifférencié, alors que les progéniteurs proches de la ligne médiane qui ne sont pas en contact avec Jag2 se différencient en motoneurones. Pendant cette phase neurogénique, Hes5 induit par Jag2, lui-même contrôlé par le morphogène Sonic Hedgehog (Shh), empêche la différenciation prématurée des progéniteurs de la partie latérale de pMN en cellules oligodendrocytaires. À l’issue de cette phase, l’absence d’expression de Jag2 dans le domaine pMN autorise l’oligodendrogenèse. C-2. Au cours de l’embryogenèse tardive jusqu’au sixième jour post-natal (P6), la voie Notch canonique est activée par le ligand Jag1 et induit la transcription de Hes1 qui empêche la maturation des OPC (oligodendrocyte progenitor cells). Après P6, la voie Notch non canonique est activée par le ligand F3/contactine et induit la transcription du gène codant la glycoprotéine associée à la myéline (MAG [myelin-associated glycoprotein]) et par conséquent la différenciation des OPC.

La signalisation Notch apparaît comme l’un des mécanismes essentiels de la régulation de l’équilibre entre le maintien et la différenciation des CSN adultes [7, 25]. Comme chez l’embryon, les composantes de la voie, en particulier Notch1, Jag1 et Dll1, sont exprimées dans les aires germinatives du cerveau adulte. Dans la zone sous-ventriculaire (ZSV), les ligands de Notch sont observés dans les astrocytes, dans un nombre limité de TAP (transient amplifying progenitors ou cellules C), mais aussi dans les cellules épendymaires dans le cas de Dll1. Notch1 est, quant à lui, exprimé aux différents stades de différenciation des progéniteurs, depuis les CSN jusqu’aux neuroblastes (cellules A) [6]. Dans la zone sous-granulaire (ZSG), Jag1 est détecté dans les CSN et les précurseurs neuronaux. L’expression stable ou oscillatoire des gènes Hes n’a pas encore été établie dans les CSN adultes.

L’inactivation conditionnelle et inductible de RBPj ou de Notch1 dans les cellules neurales indifférenciées nestine⁺ montre le rôle primordial de la signalisation Notch canonique dans le maintien à long terme des CSN adultes (cellules B) de la ZSV (Figure 4). Le phénotype global des animaux mutants reflète une conversion prématurée des CSN en TAP, cellules qui, douées d’une capacité d’autorenouvellement limitée, finiront par se différencier en neurones. Des discordances existent pourtant entre les deux phénotypes. Elles révèlent que Notch1 est capable de maintenir les CSN actives en prévenant leur transition vers les TAP, mais est incapable de maintenir les CSN quiescentes, laissant supposer que des récepteurs autres que Notch1 pourraient être impliqués [26]. Notch est également indispensable pour maintenir la quiescence des cellules épendymaires de la niche et prévenir leur conversion en CSN [27]. Dans le télencéphale de poisson zèbre adulte, il a été clairement établi que les CSN alternent entre quiescence et division en fonction du niveau d’activation de Notch, qu’un mécanisme d’inhibition latérale existe aussi dans ce contexte, et que des récepteurs distincts régulent de façon différentielle les sous-populations de CSN quiescentes et activées. Ainsi, Notch3 prévient l’activation et l’amplification des CSN quiescentes, alors que Notch1b empêche la différenciation des CSN activées vers le lignage neuronal [28]. Chez la souris, le ligand Dll1 exprimé dans les CSN activées est lui-même directement impliqué dans le maintien des CSN de la niche puisque, lors des divisions asymétriques, une seule des deux cellules filles est capable d’exprimer Dll1 et de se différencier, alors que l’autre reste indifférenciée et quiescente [29].

Figure 4. Notch et les aires neurogéniques adultes. A. Schéma illustrant la neurogenèse dans la zone sous-ventriculaire (ZSV) qui borde le ventricule latéral. Les cellules souches neurales (CSN) adultes (cellules B) génèrent continuellement de nouveaux neurones immatures (neuroblastes ou cellules A) qui, après migration à travers le tissu cérébral, se différencient en neurones matures dans les bulbes olfactifs. Dans la ZSV, la signalisation Notch maintient les CSN, empêche leur activation et leur conversion en TAP (transient amplifying progenitors ou cellules C). Elle maintient aussi les cellules épendymaires (CE) dans un état différencié prévenant leur conversion en CSN. Certains neurones striataux expriment EGFL7 (epidermal growth factor-like domain 7), un antagoniste de Jag1. En cas de lésion, la libération accrue de EGFL7 pourrait bloquer la signalisation Notch canonique pour favoriser la génération de quantités plus importantes de nouveaux neurones. B. Schéma illustrant la neurogenèse dans la zone sous-granulaire (ZSG). L’autorenouvellement des CSN dépend de la signalisation Notch qui par ailleurs empêche la transition CSN vers neuroblastes. La voie canonique participe également au développement de l’arborisation dendritique des neurones nouvellement générés en cours de maturation par un mécanisme faisant vraisemblablement intervenir la neurogénine 3. Les flèches noires indiquent un effet activateur de la signalisation Notch. Les flèches noires barrées d’une croix rouge indiquent un effet inhibiteur de la signalisation Notch.

Figure 4. Notch et les aires neurogéniques adultes. A. Schéma illustrant la neurogenèse dans la zone sous-ventriculaire (ZSV) qui borde le ventricule latéral. Les cellules souches neurales (CSN) adultes (cellules B) génèrent continuellement de nouveaux neurones immatures (neuroblastes ou cellules A) qui, après migration à travers le tissu cérébral, se différencient en neurones matures dans les bulbes olfactifs. Dans la ZSV, la signalisation Notch maintient les CSN, empêche leur activation et leur conversion en TAP (transient amplifying progenitors ou cellules C). Elle maintient aussi les cellules épendymaires (CE) dans un état différencié prévenant leur conversion en CSN. Certains neurones striataux expriment EGFL7 (epidermal growth factor-like domain 7), un antagoniste de Jag1. En cas de lésion, la libération accrue de EGFL7 pourrait bloquer la signalisation Notch canonique pour favoriser la génération de quantités plus importantes de nouveaux neurones. B. Schéma illustrant la neurogenèse dans la zone sous-granulaire (ZSG). L’autorenouvellement des CSN dépend de la signalisation Notch qui par ailleurs empêche la transition CSN vers neuroblastes. La voie canonique participe également au développement de l’arborisation dendritique des neurones nouvellement générés en cours de maturation par un mécanisme faisant vraisemblablement intervenir la neurogénine 3. Les flèches noires indiquent un effet activateur de la signalisation Notch. Les flèches noires barrées d’une croix rouge indiquent un effet inhibiteur de la signalisation Notch.

Le niveau d’activation de la signalisation Notch semble contribuer à l’hétérogénéité des CSN adultes. Par exemple, un nouveau type de CSN, qui exprime Hes5 et un autre gène cible de la signalisation Notch, le gène codant la protéine de liaison des acides gras cérébraux (BLBP, brain lipid-binding protein), a été récemment caractérisé dans la ZSV de la souris adulte [2]. Par ailleurs, dans le télencéphale du poisson zèbre, diverses combinaisons Her/Hes ont été identifiées dans les cellules de la glie radiale quiescente. Comment ces expressions combinatoires régulent-elles le devenir et l’activité des CSN adultes est un point qui reste à analyser. Les mécanismes moléculaires contrôlant l’activité de Notch dans la ZSV adulte commencent aussi à être décryptés. Une communication étroite existe entre les CSN et les TAP : ces dernières, via le récepteur de l’EGF (epidermal growth factor) qu’elles expriment à leur surface, régulent négativement la signalisation Notch dans les CSN en augmentant l’expression de Numb, un activateur des E3 ubiquitine ligases qui dégradent Notch [30]. Des signalisations locales, comme par exemple la voie Hedgehog, sont aussi des régulateurs des signaux Notch dans les CSN [31].

La ZSG fait appel au même mécanisme que la ZSV pour maintenir les CSN, comme l’indique le rôle essentiel de RBPj dans le maintien à long terme des CSN dans cette région (Figure 4). L’inactivation de RBPj, Notch1 et Jag1 est, comme précédemment, à l’origine de phénotypes divergents [2, 6, 25, 32]. Ces divergences peuvent s’expliquer par l’expression de récepteurs autres que Notch1 dans les CSN, la mise en jeu de signalisations indépendantes de RBPj comme Jak/Stat et Hes3 [33], ou l’activation de Notch par d’autres ligands que Jag1 [32]. Notch possède également un rôle additionnel dans la maturation des nouveaux neurones issus de la ZSG : il régule leur capacité à développer des neurites via le processus d’inhibition de contact [25, 34].

Enfin, la signalisation Notch a aussi été impliquée dans la production de deux autres catégories de neurones dans le système nerveux central post-natal. D’une part, elle maintient la prolifération et inhibe la différenciation des progéniteurs des neurones granulaires du cervelet. D’autre part, elle induit la différenciation des neurones impliqués dans le contrôle de la sensibilité nociceptive dans la moelle épinière. Ces observations permettent à l’heure actuelle de proposer qu’une activation anormale de la signalisation Notch2 pourrait participer au développement de tumeurs du cervelet (ou médulloblastomes) [35], et qu’un hypofonctionnement de Notch3 pourrait être associé à l’apparition de douleurs neuropathiques chroniques [36].

La capacité du système nerveux central à se réparer est étroitement liée à sa capacité de production de nouvelles cellules. L’implication de la signalisation Notch dans ce processus a fait l’objet de multiples études dans des contextes variables. À l’issue d’un épisode ischémique, la signalisation Notch est activée et participe au processus apoptotique, à la réponse immuno-inflammatoire et à la gliogenèse réactive contribuant à l’invasion cellulaire de la région périlésionnelle [27, 37]. L’expression de Notch1 et Notch2 est notamment induite dans les neurones matures. Elle est aussi primordiale pour la prolifération des CSN de la ZSV et de la ZSG qui participent au processus de réparation. Cependant, au-delà de cette étape, une régulation négative de la signalisation Notch est ensuite nécessaire pour permettre aux nouveaux progéniteurs de se différencier en neurones. L’un des modulateurs endogènes négatifs de la voie Notch pourrait être la molécule EGFL7 (epidermal growth factor-like domain 7) sécrétée à proximité de la ZSV par les neurones du striatum et capable d’entrer en compétition avec Jag1 pour sa liaison à Notch dans la ZSV. En accord avec cette hypothèse, l’expression d’EGFL7 dans les CSN en culture réduit leur prolifération et oriente leur différenciation vers un excès de neurones et d’oligodendrocytes [38]. Cependant, des observations apparemment discordantes concernant le rôle de Notch dans l’ischémie cérébrale demeurent. Ainsi, l’activation de la voie s’est révélée, d’une part, améliorer les paramètres fonctionnels dans un modèle murin d’occlusion de l’artère cérébrale moyenne [33], mais, d’autre part, prévenir la mobilisation des cellules épendymaires, les empêchant de donner naissance aux neuroblastes qui contribuent à la réparation des aires endommagées [27]. Ces discordances soulignent la nécessité d’une dissection très fine des mécanismes moléculaires impliqués et de leur dynamique temporelle en réponse à l’événement lésionnel avant de pouvoir envisager la signalisation Notch comme une cible thérapeutique dans ces pathologies.

Dans le contexte de la réparation de la myéline, plusieurs études ont conclu à un effet assez modéré de la voie Notch canonique qui est un régulateur négatif de la différenciation des OPC (oligodendrocyte progenitor cells). Ce résultat est sans doute lié à l’activation compétitive de la signalisation Notch non canonique qui, à l’inverse, induit la différenciation de ces cellules [39]. L’expression élevée de Notch1 par les OPC et de F3/contactine par les axones démyélinisés, dans des lésions chroniques de sclérose en plaques chez l’homme, devrait ainsi favoriser la réparation. Cependant, il est apparu que dans ces lésions, une insuffisance du transport intranucléaire du domaine intracellulaire de Notch (NICD, Notch intracellular domain) existe, lié à l’expression accrue pathologique d’un inhibiteur de cette translocation [40]. Des régulateurs positifs de la voie Notch canonique participent aussi au blocage de la réparation. C’est par exemple le cas de l’endothéline-1 qui induit le ligand Jag1 dans les astrocytes réactifs présents au sein des lésions de démyélinisation [41].

Dans la maladie d’Alzheimer, l’activité Notch est réduite dans les formes familiales d’apparition précoce, mais augmentée dans les formes sporadiques comme dans d’autres pathologies neurodégénératives telles que le syndrome de Down (lié à la trisomie 21) ou les maladies à prions [37]. Les causes de telles différences dans le contrôle de la signalisation Notch restent à être élucidées de même que la contribution effective de Notch au développement de ces pathologies.

La manipulation des signalisations Notch est de toute évidence une approche à considérer dans un contexte thérapeutique. Il est cependant indispensable de tenir compte d’une observation récente faite chez le poisson zèbre. Des compartiments de CSN différents (cellules neuroépithéliales her4^- et cellules de la glie radiale her4⁺) coexistent dès le développement embryonnaire et persistent à l’âge adulte, et ils possèdent des capacités neurogéniques variables. Il sera donc important d’activer les CSN ayant l’identité régionale et l’origine développementale appropriées au processus régénératif considéré [42]. De plus, il ne faut pas perdre de vue que les processus régénératifs déclinent avec l’âge. Là encore, le rôle de la signalisation Notch dans le contrôle des différentes sous-populations de CSN reste un domaine d’investigation à part entière ; il permettra notamment de déterminer si ce déclin reflète un épuisement des CSN actives, une augmentation des CSN quiescentes ou, plus vraisemblablement, un état de dormance des CSN qui sont cependant susceptibles d’être réactivées [2].

Malgré l’étendue des connaissances actuelles sur la diversité des récepteurs Notch et de leurs ligands, leurs interactions possibles, leurs localisations subcellulaires et leurs mécanismes régulateurs, il reste encore beaucoup de questions concernant la voie Notch dans les cellules souches neurales embryonnaires et adultes (voir Encadré). L’aspect dynamique de cette signalisation requiert le développement d’approches très performantes d’imagerie en temps réel à l’échelle cellulaire et subcellulaire, mais aussi la production de systèmes de modélisation dans lesquels les aspects dynamiques peuvent être testés sur des échelles de temps extrêmement courtes. Ces approches devraient participer à une meilleure compréhension de la complexité qui accompagne, en particulier, la formation du néocortex au cours du développement cérébral tant physiologique que pathologique. Améliorer nos connaissances sur le rôle exact des signalisations Notch et l’identification des médiateurs moléculaires dépendant de Notch dans les processus neuro- et gliogéniques peut ouvrir la voie au développement de nouvelles thérapies des traumatismes, des maladies neurodégénératives ou du vieillissement pathologique, comme cela a été précédemment proposé dans des pathologies atteignant d’autres tissus de l’organisme [43, 44]. En effet, en raison de sa capacité à maintenir le caractère souche des cellules cancéreuses, la signalisation Notch est une cible majeure dans de nombreuses tumeurs y compris les glioblastomes. Son blocage est actuellement obtenu par des inhibiteurs de γ-sécrétase qui sont en phase d’essai clinique comme approche antitumorale. Des molécules plus spécifiques, notamment des anticorps dirigés contre Notch1, Notch2, Notch3 ou Dll4, sont aussi progressivement développées et en cours d’évaluation clinique. La cible thérapeutique que constitue la signalisation Notch, dans les pathologies neurodégénératives par exemple, bénéficiera de toute évidence des avancées actuelles en cancérologie. Enfin, le développement de petites molécules plus spécifiques que les inhibiteurs de γ-sécrétase, capables de moduler sélectivement les composantes de la signalisation Notch, canonique ou non canonique, impliquées dans le processus pathologique à considérer, et dépourvues d’effets hors-cible liés au blocage de la signalisation Notch dans les organes périphériques, fait partie des défis thérapeutiques actuels [45].

Les auteurs déclarent n’avoir aucun lien d’intérêt concernant les données publiées dans cet article.