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dc.contributor.authorDes Georges, Mfr_FR
dc.contributor.authorGuittard, Cfr_FR
dc.contributor.authorClaustres, Mfr_FR
dc.date.accessioned2012-08-23T07:50:07Z
dc.date.available2012-08-23T07:50:07Z
dc.date.issued1998fr_FR
dc.identifier.citationDes Georges, M ; Guittard, C ; Claustres, M, Les bases moléculaires de la mucoviscidose en France : plus de 300 mutations et 506 génotypes différents sont en cause., Med Sci (Paris), 1998, Vol. 14, N° 12; p.1413-21fr_FR
dc.identifier.issn1958-5381fr_FR
dc.identifier.urihttp://hdl.handle.net/10608/984
dc.description.abstractNous avons collecté auprès de 19 laboratoires impliqués dans le diagnostic moléculaire de la mucoviscidose en France les données alléliques et/ou génotypiques de près de 3 595 patients. L’analyse de 7 190 allèles révèle l’existence de 300 mutations différentes parmi les 6 700 allèles mutés identifiés (taux global de détection = 93,18 %), totalisant près de 40% des 770 mutations CFTR (cystic fibrosis transmembrane conductance regulator) répertoriées à ce jour dans le monde. La délétion ΔF508 est présente sur 4 833 allèles (67,21 %), avec un gradient décroissant entre le Nord (70 %) et le Sud (61 %) du pays, et une fréquence spécifique de 81% dans la population celtique de Bretagne. Viennent ensuite G542X (2,89 % ; 1-6,6 %), N1303K (2,05%; 0,75-4,5 %), 1717 – 1G > A (1,33%; 0-2,7 %), et 2789 + 5G > A (1%; 0-2,8 %). Seules 9 autres mutations ont une fréquence supérieure à 0,4 % (G551D, W1282X, R553X, ΔI507, 2183AA > G, 1078delT, 711 + 1G > T, R1162X, et Y1092X). 133 mutations ont été identifiées sur un faible nombre de chromosomes (de 28 à 2), et 153 sont présentes en un seul exemplaire. Ce spectre de mutations CFTR, le plus large rapporté jusqu’ici pour un seul pays, est à l’origine de 506 génotypes délétères différents. Cette étude souligne l’hétérogénéité allélique de la mucoviscidose en France et met en évidence des disparités régionales et ethniques dans la distribution de certaines mutations. Ces informations seront utiles pour améliorer la détection des mutations et la précision du conseil génétique, ainsi que pour orienter de futures stratégies thérapeutiques.fr
dc.description.abstractWe have collated the results of cystic fibrosis (CF) mutation analysis conducted in 19 laboratories in France. 7190 CF allelcs have been analyzed, demonstrating a total of 300 different mutations so far observed and accounting for 93.18% of CF genes in patients living in France. This mutational spectrum represent 40% of the 770 mutations described worldwide. DeltaF508 is the most common at 67.21% of CF mutations (range 61-70 between Northern and Southern regions) including a unique frequency of 81% in the Celtic Brittany, followed by G542X (2.89%; range 1-6.6%), N1303K (2.05%; range 0.75-4.5%), 1717-1G > A (1.33 %; range 0-2.7%), and 2789 + 5G > A (1%; range 0-2.8%). Only 9 mutations had relative frequency > 0.4% (G551D, W1282X, R553X, Delta1507, 2183AA > G, 1078delT, 711 + 1G > T, R1162X and Y1092X. 133 mutations were found on a small number of CF alleles (from 28 to 2), and 153 were unique. There was a clear geographical and/or ethnic variation in the distribution of several mutations. Overall, at least 506 different genotypes were found responsible for CF. These data demonstrate a high allelic heterogeneity of CF in France and illustrate that the mutations present within a particular population need to be defined in order to provide meaningful carrier screening and testing for rare mutations in affected individuals. [References: 17]en
dc.language.isofrfr_FR
dc.publisherMasson Périodiques, Parisfr_FR
dc.rightsArticle en libre accèsfr
dc.rightsMédecine/Sciences - Inserm - SRMSfr
dc.sourceM/S. Médecine sciences [revue papier, ISSN : 0767-0974], 1998, Vol. 14, N° 12; p.1413-21fr_FR
dc.titleLes bases moléculaires de la mucoviscidose en France : plus de 300 mutations et 506 génotypes différents sont en cause.fr
dc.title.alternativeMolecular basis of cystic fibrosis in France: more than 300 different mutations and 506 genotypes are involvedfr_FR
dc.typeArticlefr_FR
dc.contributor.affiliationLaboratoire de genetique moleculaire, IGH-Cnrs UPR 1142 et CHU, Institut de biologie, boulevard Henri-IV, 34060 Montpellier, France; Laboratoire de biochimie pediatrique, Hopital Debrousse, 29, rue Soeur-Bouvier, 69322 Lyon, France; Centre de biogenetique, ETSBO, 46, rue Felix-le-Dante, BP 454, 29275 Brest, France; Laboratoire de biochimie, Hopital Henri-Mondor, 51, avenue du Marechal-de-Lattre-de-Tassigny, 94010 Creteil, France; Laboratoire de biochimie et genetique moleculaire, Pavillon Cassini, Groupe hospitalier Cochin, 123, boulevard de Port-Royal, 75014 Paris, France; Laboratoire de biochimie et de biologie moleculaire, Hopital Trousseau, 24-26, rue Docteur-Arnold-Netter, 75012 Paris, France; Laboratoire de genetique medicale, Hopital Purpan, Pavillon Lefebvre, place du Docteur-Baylac, 35033 Rennes, France; Laboratoire de genetique moleculaire, CHU Pontchaillou, 2, rue Henri-le-Guillon, 35033 Rennes, France; Conformations cellulaires et moleculaires, Inserm U.314, CHR Maison-Blanche, 45, rue Cognacq-Jay, 51092 Reims, France; Laboratoire de biochimie, biologie moleculaire et enzymologie, Faculte de medecine, 28, place Henry-Dunant, 63001 Clermont-Ferrand, France; Service de genetique, CHU d'Angers, 4, rue Larrey, 49043 Angers, France; Biochimie de l'ADN, Hopital de la Tronche, BP 217, 38043 Grenoble, France; Biologie moleculaire appliquee, Centre de diagnostic prenatal, Hopital de la Timone, rue Saint-Pierre, 13383 Marseille, France; Laboratoire de Biochimie B, CHU George-Clemenceau, 14033 Caen, France; Biochimie B, Tour Lavoisier, Hopital Necker-Enfants Malades, 149,-
dc.identifier.doi10.4267/10608/984


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