Les interactions entre les cellules et la matrice extracellulaire (MEC) jouent un rôle important dans le contrôle du comportement cellulaire. Ce contrôle s’effectue par des interactions spécifiques entre les molécules matricielles et les cellules grâce à des récepteurs transmembranaires, principalement de la famille des intégrines, dont le domaine intracellulaire est relié aux constituants du cytosquelette. Cela permet à la matrice d’assurer la transmission dans la cellule de signaux qui vont moduler, selon les cas, l’adhérence, la migration, la prolifération, la différenciation ou l’apoptose. Ce contrôle du comportement cellulaire est crucial au cours du développement, mais, également lors des remaniements tissulaires physiologiques et pathologiques.

On distingue plusieurs types de matrice extracellulaire, selon les molécules qui les constituent et l’organisation qui en découle, les lames basales étant sans doute les plus spécialisées. Ces dernières sont de fins treillis protéiques continus sur lesquels reposent les différents feuillets cellulaires de l’organisme. Elles ont longtemps été définies comme des structures morphologiques à part dont la fonction était limitée au cloisonnement des compartiments tissulaires. C’est seulement au cours des quinze dernières années que, malgré leur faible représentativité et leur grande insolubilité, la composition moléculaire et les fonctions des lames basales ont été analysées en détail. Il apparaît que ces structures jouent un rôle fondamental dans le contrôle du comportement cellulaire, tant au cours du développement embryonnaire que dans le maintien de l’intégrité des phénotypes cellulaires différenciés (Figure 1).

Figure 1. Illustration schématique de la structure des lames basales. Les membres de la famille des laminines sont des constituants majeurs des lames basales, fins feuillets de matrice extracellulaire au contact des cellules ou localisés à l’interface entre un épithélium et un tissu conjonctif. Les laminines comportent trois chaînes génétiquement distinctes, α, β et γ, reliées par des ponts disulfures. Cinq chaînes α (α1 à α5), trois chaînes β (β1 à β3) et trois chaînes γ (γ1 à γ3) ont été identifiées chez les mammifères et le nombre connu de combinaisons est de 12 trimères différents (LN-1 à LN-12) ayant chacun une localisation tissulaire précise. À noter qu’outre les laminines, les lames basales comportent d’autres composants matriciels comme les collagènes IV, les nidogènes et des protéoglycanes. Ces molécules interagissent et forment des assemblages moléculaires précis conférant à ces tissus une extrême solidité.

Figure 1. Illustration schématique de la structure des lames basales. Les membres de la famille des laminines sont des constituants majeurs des lames basales, fins feuillets de matrice extracellulaire au contact des cellules ou localisés à l’interface entre un épithélium et un tissu conjonctif. Les laminines comportent trois chaînes génétiquement distinctes, α, β et γ, reliées par des ponts disulfures. Cinq chaînes α (α1 à α5), trois chaînes β (β1 à β3) et trois chaînes γ (γ1 à γ3) ont été identifiées chez les mammifères et le nombre connu de combinaisons est de 12 trimères différents (LN-1 à LN-12) ayant chacun une localisation tissulaire précise. À noter qu’outre les laminines, les lames basales comportent d’autres composants matriciels comme les collagènes IV, les nidogènes et des protéoglycanes. Ces molécules interagissent et forment des assemblages moléculaires précis conférant à ces tissus une extrême solidité.

Les laminines (LN), glycoprotéines principalement localisées dans les lames basales, représentent une famille de molécules dont les propriétés biologiques et structurales ont suscité un intérêt grandissant ces dernières années [1]. Identifiées au départ comme des constituants structuraux, il est clair aujourd’hui que les laminines entretiennent avec les cellules des relations étroites et leur transmettent des informations morphogénétiques importantes. Les laminines sont composées de trois chaînes polypeptidiques génétiquement distinctes, α, β et γ, reliées par des ponts disulfures. La structure primaire de 5 chaînes α (α1 à α5), de 3 chaînes β (β1 à β3) et de 3 chaînes γ (γ1 à γ3) a été déduite du séquençage des ADN complémentaires correspondants et les analyses biochimiques ont permis de mettre en évidence l’existence de 15 trimères différents (LN-1 à LN-15) [1]. L’expression et l’assemblage des différentes sous-unités varient de façon spatio-temporelle laissant présumer des rôles biologiques et structuraux spécifiques de chaque isoforme. Ces observations illustrent l’importance des laminines dans l’organisation tissulaire. Néanmoins, les mécanismes cellulaires et moléculaires qui sont à la base de leurs fonctions spécifiques et de leurs rôles biologiques et structuraux ne sont pas complètement connus.

La laminine 5 (LN-5) est spécifiquement exprimée dans les lames basales des épithéliums squameux et transitionnels spécialisés qui ont des fonctions de sécrétion ou de protection, comme les muqueuses ou la peau. La LN-5 résulte de l’assemblage hétérotrimérique des sous-unités α3, β3 et γ2 et est synthétisée exclusivement par les cellules épithéliales sous la forme d’un précurseur de 460 kDa (Figure 2). Les parties carboxy-terminales des trois chaînes sont assemblées sous la forme d’une hélice α super-enroulée et la chaîne α3, plus longue que les deux autres, comporte un domaine globulaire constitué de 5 répétitions de résidus basiques (globules LG1 à LG5). Dans les conditions physiologiques, chacune des sous-unités α3 et γ2 subit un clivage posttraductionnel extracellulaire de ses extrémités carboxy- et amino-terminale respectivement, aboutissant à la forme tissulaire mature [2]. Un clivage supplémentaire d’un fragment de 20 kDa se produit également, dans certaines conditions, à l’extrémité amino-terminale de la chaîne α3 [2, 3]. La plasmine et la BMP1 (bone morphogenetic protein-1) ont été initialement tenues pour responsables de la coupure du module LG4-LG5 (LG4/5) de la chaîne α3 [3, 4]. Toutefois, la caractérisation récente du site de clivage contredit cette hypothèse et indique qu’une enzyme de la famille des métalloprotéases matricielles (MMP) en serait l’auteur (→) [5]. La BMP1 est l’enzyme responsable du clivage de la chaîne γ2 [3], et l’intervention simultanée d’isomérases spécifiques est nécessaire au remaniement de certains ponts disulfures et au détachement définitif du fragment amino-terminal [6]. Des études récentes indiquent que la totalité de la chaîne γ2 sous sa forme de précurseur est nécessaire à la sécrétion et à l’intégration de la LN-5 dans la matrice extracellulaire [7].

(→) m/s 2002, n°5, p. 519

Figure 2. Maturation protéolytique et ancrage de la laminine 5. La LN-5 est synthétisée puis sécrétée par les cellules épithéliales sous la forme d’un précurseur. Dans les conditions physiologiques, les sous-unités α3 et γ2 subissent un clivage post-traductionnel extracellulaire de leur extrémité carboxy-terminale pour α3 (1) et amino-terminale pour γ2 (2). Ces clivages aboutissent à la forme tissulaire mature. Un clivage supplémentaire de l’extrémité amino-terminale de la sous-unité α3 a également été décrit (3). La LN-5 tissulaire a été décrite comme jouant un rôle crucial et irremplaçable dans la cohésion dermo-épidermique. De plus, elle transmet des signaux biologiques déterminants puisqu’elle permet l’adhérence des kératinocytes, par l’intermédiaire de récepteurs membranaires de la famille des intégrines, et induit l’assemblage des structures d’adhérence stable que sont les hémidesmosomes. BMP-1 : bone morphogenetic protein 1 ; MMP : métalloprotéases matricielles.

Figure 2. Maturation protéolytique et ancrage de la laminine 5. La LN-5 est synthétisée puis sécrétée par les cellules épithéliales sous la forme d’un précurseur. Dans les conditions physiologiques, les sous-unités α3 et γ2 subissent un clivage post-traductionnel extracellulaire de leur extrémité carboxy-terminale pour α3 (1) et amino-terminale pour γ2 (2). Ces clivages aboutissent à la forme tissulaire mature. Un clivage supplémentaire de l’extrémité amino-terminale de la sous-unité α3 a également été décrit (3). La LN-5 tissulaire a été décrite comme jouant un rôle crucial et irremplaçable dans la cohésion dermo-épidermique. De plus, elle transmet des signaux biologiques déterminants puisqu’elle permet l’adhérence des kératinocytes, par l’intermédiaire de récepteurs membranaires de la famille des intégrines, et induit l’assemblage des structures d’adhérence stable que sont les hémidesmosomes. BMP-1 : bone morphogenetic protein 1 ; MMP : métalloprotéases matricielles.

Le rôle majeur de la LN-5 est souligné par l’existence de maladies héréditaires ou acquises, résultant d’une anomalie de synthèse et/ou d’expression de l’une de ses sous-unités constitutives. Ces maladies, appelées épidermolyses bulleuses jonctionnelles, conduisent notamment à une fragilité de la jonction dermo-épidermique de la peau caractérisée par la formation spontanée de bulles épidermiques (→). La LN-5 joue ainsi un rôle crucial et irremplaçable dans la cohésion épithélio-mésenchymateuse. Elle est associée de façon covalente à la LN-6 (α3β1γ1) [2], formant ainsi une véritable charpente moléculaire, cible de multiples interactions. Par ailleurs, l’ancrage de la LN-5 au stroma sous-jacent est assuré par la liaison de ses bras courts aux extrémités globulaires du collagène VII, composant majeur des fibrilles d’ancrage [8].

(→) m/s 2000, n°12, p. 1371

La LN-5 a un rôle biologique déterminant puisqu’elle permet l’adhérence des cellules épithéliales adjacentes par l’intermédiaire des intégrines et induit l’assemblage des structures d’adhérence stable que sont les hémidesmosomes. Le site d’adhérence et de liaison aux intégrines α3β1 et α6β4 est localisé sur les globules LG1-LG2-LG3 [9, 10]. De nombreux travaux montrent que c’est l’interaction de l’intégrine α6β4 avec la LN-5 mature qui déclenche l’assemblage des hémidesmosomes intracellulaires [10]. La LN-5 mature constituerait ainsi une barrière à la motilité cellulaire [4, 11]. Le rôle exact de l’intégrine α3β1 n’est pas connu. Sa participation au contrôle de la prolifération et/ou de la migration cellulaire a été proposée. Une fonction dans l’organisation des composants de la lame basale lui a été attribuée ainsi qu’une participation au processus d’activation de certaines enzymes [9, 12].

Un certain nombre de situations biologiques comme le développement embryonnaire, les réponses immunitaires, la réparation tissulaire et l’invasion tumorale impliquent des mouvements cellulaires et mettent en jeu les mécanismes de migration cellulaire. La mise en place du processus de migration des cellules épithéliales induit des bouleversements phénotypiques et nécessite des interactions spécifiques avec les composants matriciels. La dissolution des hémidesmosomes est l’une des conséquences de ces nouvelles interactions, qui doivent êtres compatibles avec la migration cellulaire.

Les chercheurs ont rapidement compris que la LN-5 non seulement assurait une adhérence stable, mais pouvait aussi jouer un rôle au cours de la migration des cellules épithéliales. Les premiers indices rapportaient une expression et une synthèse accrues de la LN-5 par des kératinocytes mobiles in vitro [13]. Des études in vivo de la cicatrisation cutanée ont montré une expression accrue des différentes chaînes de la LN-5 par les kératinocytes localisés dans la zone de colonisation de la plaie [14]. La LN-5 sous sa forme de précurseur a ainsi été identifiée comme le composant matriciel majeur au contact des kératinocytes migrants, indiquant que l’absence de clivage des chaînes α3 [4, 15] et γ2 [16] serait nécessaire à la migration de ces cellules. Ainsi, la molécule précurseur permettrait la migration des kératinocytes en empêchant la formation des hémidesmosomes (Figure 3). Des études récentes indiquent qu’un récepteur membranaire de la famille des syndécanes [17] se lie spécifiquement au module LG4/5. De plus, l’intégrine α2β1 interagirait avec la chaîne γ2 sous forme de précurseur au cours de la migration cellulaire [16]. La complexité des mécanismes mis en œuvre au cours de la migration cellulaire est étayée par quelques résultats contradictoires. En effet, un ensemble de résultats a permis d’attribuer à la LN-5 mature la capacité d’induire la migration de certaines lignées cellulaires [18, 19]. L’habileté de ces cellules à migrer sur la LN-5 serait constitutive et liée à leur capacité d’exprimer spécifiquement les métalloprotéases matricielles, MMP2 ou MT1-MMP [19, 20]. Ces enzymes présentent la particularité de tronquer massivement la chaîne γ2, ce qui démasquerait, selon les auteurs, un signal inducteur de la migration cellulaire. Ces observations rejoignent les résultats de travaux précédents montrant que la LN-5 ajoutée au milieu de culture entraîne la dispersion des cellules de ces mêmes lignées [21], effet qui n’est pas observé dans le cas des kératinocytes de la peau. Cet effet est donc strictement dépendant des cellules impliquées et de leur répertoire enzymatique. Si les mécanismes moléculaires à la base des interactions entre les cellules et la LN-5 au cours de la migration cellulaire sont encore imparfaitement compris, il apparaît toutefois que l’interaction de l’intégrine α3β1 avec le module LG3 est déterminante aussi bien au cours de l’adhérence que de la migration cellulaire [22, 23].

Figure 3. Deux formes moléculaires de la LN-5 sont associées à la migration cellulaire. La LN-5 sous sa forme de précurseur semble impliquée dans la migration de certaines cellules épithéliales : elle empêcherait la formation de structures d’ancrage stables par les intégrines. La maturation de la molécule permettrait de passer à un état stationnaire concrétisé par la formation des hémidesmosomes et un ancrage stable. Un clivage spécifique supplémentaire de la chaîne γ2 par la métalloprotéase matricielle 2 (MMP2) a été mis en évidence dans certains systèmes cellulaires présentant une capacité accrue de migration. La signification biologique de ce clivage n’est pas connue. Cependant, il n’est pas exclu qu’il favorise la dissociation des assemblages propres à l’ancrage stable et qu’il permette, dans certaines circonstances, la mobilité cellulaire.

Figure 3. Deux formes moléculaires de la LN-5 sont associées à la migration cellulaire. La LN-5 sous sa forme de précurseur semble impliquée dans la migration de certaines cellules épithéliales : elle empêcherait la formation de structures d’ancrage stables par les intégrines. La maturation de la molécule permettrait de passer à un état stationnaire concrétisé par la formation des hémidesmosomes et un ancrage stable. Un clivage spécifique supplémentaire de la chaîne γ2 par la métalloprotéase matricielle 2 (MMP2) a été mis en évidence dans certains systèmes cellulaires présentant une capacité accrue de migration. La signification biologique de ce clivage n’est pas connue. Cependant, il n’est pas exclu qu’il favorise la dissociation des assemblages propres à l’ancrage stable et qu’il permette, dans certaines circonstances, la mobilité cellulaire.

On désigne sous le nom de carcinomes des cancers issus de cellules épithéliales ayant perdu tout contrôle de leur prolifération et de leur capacité de se différencier. L’acquisition du caractère malin d’un carcinome se traduit par sa capacité de traverser la lame basale, d’envahir le tissu conjonctif sous-jacent et de fonder des métastases à distance de la tumeur initiale. Les interactions entre les cellules et la matrice extracellulaire jouent un rôle primordial dans les étapes initiales du processus invasif. Elles aboutissent à une augmentation de l’adhérence et de la migration cellulaire, mais également à la dégradation progressive de la matrice extracellulaire par un processus protéolytique. Des hypothèses ont été émises concernant la liaison spécifique possible des cellules sur les laminines lors de cette étape de progression tumorale.

Des travaux récents ont montré l’implication possible de la LN-5 dans le processus de malignité de certains carcinomes (adénocarcinomes du côlon, cancers gastriques, cancers de la prostate, du poumon, du pancréas et du col de l’utérus). Les études menées sur des tumeurs humaines ont montré une corrélation entre le caractère invasif de ces carcinomes et l’expression de la LN-5 par les cellules bourgeonnantes de ces tumeurs [24–26]. L’augmentation de synthèse de la LN-5 par ces cellules constituerait, selon les auteurs, une étape clé nécessaire au déclenchement et au déroulement du processus migratoire invasif. La LN-5 néosynthétisée et sécrétée représenterait un substrat propice à la migration cellulaire.

Ainsi, l’expression accrue de la chaîne γ2, examinée par des techniques d’immunohistochimie, reflèterait le fort potentiel invasif de ces cancers. Les anticorps monoclonaux spécifiques de cette protéine sont des outils actuellement utilisés pour établir le pronostic des patients atteints de ces cancers.

D’autres études rapportent au contraire, qu’une diminution de l’expression extracellulaire de la LN-5 serait à l’origine de la dissolution des hémidesmosomes des cellules épithéliales induisant une instabilité de l’adhérence et contribuant au plus grand potentiel invasif des cellules malignes [27]. Cette hypothèse découle de travaux menés sur des patients atteints de cancers de la prostate, du pancréas et du sein. Une étude rapporte qu’une anomalie de l’assemblage intracellulaire des sous-unités de la LN-5 serait à l’origine de l’accumulation de dimères β3γ2 dans les cellules bourgeonnantes de certains cancers colorectaux [28, 29].

Toutes ces hypothèses résultent d’observations faites à partir de différentes tumeurs, et on ne connaît pour le moment ni le rôle précis de la LN-5, ni la forme moléculaire en cause dans ces mécanismes. Il semble toutefois que, compte tenu de la complexité fonctionnelle de la LN-5, différents mécanismes d’action interviennent selon les cellules impliquées et leur environnement matriciel.

De même, les détails moléculaires du processus qui transforme une cellule tumorale en une cellule ayant acquis, de surcroît, des capacités d’invasion et de migration métastatique sont encore mal connus. Si la LN-5 semble associée à cette étape clé du processus malin, elle n’est certainement pas seule responsable. Les récepteurs membranaires ainsi que les métalloprotéases exprimées par ces cellules jouent certainement un rôle crucial dans la perte de leur capacité d’adhérence au tissu d’origine et leur adressage vers d’autres cibles. Ces « acteurs extracellulaires » de la migration cellulaire constituent actuellement des cibles pour le développement de nouvelles stratégies thérapeutiques.